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				<journal-title>TIP. Revista especializada en ciencias
					químico-biológicas</journal-title>
				<abbrev-journal-title abbrev-type="publisher">TIP</abbrev-journal-title>
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				<publisher-name>Universidad Nacional Autónoma de México, Facultad de Estudios
					Superiores Zaragoza</publisher-name>
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			<article-id pub-id-type="publisher-id">00013</article-id>
			<article-id pub-id-type="doi">10.22201/fesz.23958723e.2021.328</article-id>
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					<subject>Artículos de revisión</subject>
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				<article-title>Bacterias y hongos endófitos de la familia Cactaceae y sus
					aplicaciones</article-title>
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					<trans-title>Endophytes from the Cactaceae family and its
						application</trans-title>
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						<given-names>Luis Ricardo</given-names>
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				<label>1</label>
				<institution content-type="original">Facultad de Biotecnología. Área de Química,
					Decanato de Ciencias Biológicas, Universidad Popular Autónoma del Estado de
					Puebla, 15 Poniente #1910, Barrio de Santiago. 72410, Puebla, Pue.,
					México.</institution>
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					Puebla</institution>
				<institution content-type="orgdiv1">Facultad de Biotecnología</institution>
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				<label>2</label>
				<institution content-type="original">Departamento de Ciencias Químico Biológicas,
					Universidad de las Américas Puebla, San Andrés Cholula, 72810, Puebla, México. </institution>
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					Biológicas</institution>
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				<label>3</label>
				<institution content-type="original">Área de Química, Decanato de Ciencias
					Biológicas, Universidad Popular Autónoma del Estado de Puebla, 15 Poniente
					#1910, Barrio de Santiago. 72410, Puebla, Pue., México.</institution>
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					Puebla</institution>
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					Puebla</institution>
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			<author-notes>
				<corresp id="c1">*E-mail: <email>zaidanelly.juarez@upaep.mx</email>
				</corresp>
			</author-notes>
			<!--pub-date date-type="pub" publication-format="electronic">
				<day>14</day>
				<month>03</month>
				<year>2022</year>
			</pub-date>
			<pub-date date-type="collection" publication-format="electronic"-->
				<pub-date pub-type="epub">
				<year>2021</year>
			</pub-date>
			<volume>24</volume>
			<elocation-id>e328</elocation-id>
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				<date date-type="received">
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					<license-p>Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia
						Creative Commons</license-p>
				</license>
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			<abstract>
				<title>Resumen</title>
				<p>Las especies de la familia Cactaceae habitan en zonas con altas temperaturas,
					escasez de agua y suelos con déficit de nutrimentos. Esto es el resultado de
					procesos complejos como adaptaciones fisiológicas y físicas, además de la
					coevolución con microorganismos endófitos que habitan en los tejidos vegetales
					con relevante importancia para las plantas, por facilitar su establecimiento en
					estratos rocosos, ayudar a la fijación de nitrógeno atmosférico y fósforo a
					través de bacterias, así como una acción antimicrobiana por parte de los hongos.
					Los estudios sobre bioprospección de endófitos en las cactáceas aún son escasos,
					por lo que este trabajo compila la literatura científica sobre bacterias y
					hongos endófitos en cactus disponible en las bases de datos <italic>Dialnet,
						DOAJ, EBSCO, Google académico, iSEEK, Redalyc, REDIB, Science Direct,
						SciFinder, SciELO</italic>, <italic>Springer, Web of Science</italic> y
						<italic>Wiley Online Library</italic>. La revisión dio como resultado 22
					trabajos publicados en un periodo de 33 años, de los que solamente el 36%
					analiza su bioactividad. Se destaca el uso de los endófitos en la biotecnología,
					principalmente para beneficio social (fines agrícolas y médicos), así como de
					conservación.</p>
			</abstract>
			<trans-abstract xml:lang="en">
				<title>Abstract</title>
				<p>Species of the Cactaceae family inhabit areas with high temperatures, water
					scarcity, and nutrient-deficient soils. This is a result of complex processes
					such as physiological and physical adaptations, in addition to coevolution with
					endophytic microorganisms, which are inhabit plant tissues and can have relevant
					importance for the plant such as their establishment in rocky strata, the
					atmospheric nitrogen and phosphorus fixation by bacteria, or the antimicrobial
					action by fungi. Bioprospecting studies on endophytes of cacti are still scarce,
					so this work compiles the scientific literature on endophytic bacteria and fungi
					of cacti available in the databases <italic>Dialnet, DOAJ, EBSCO, Google
						académico, iSEEK, Redalyc, REDIB, Science Direct, SciFinder,
					SciELO</italic>, <italic>Springer, Web of Science</italic> and <italic>Wiley
						Online Library</italic>. The review yielded 22 papers published in 33 years;
					only 36% of them analyzed their bioactivity. The use of endophytes for
					biotechnological transfer is highlighted, mainly for social benefit
					(agricultural and medical purposes), as well as conservation.</p>
			</trans-abstract>
			<kwd-group xml:lang="es">
				<title>Palabras clave:</title>
				<kwd>microorganismos</kwd>
				<kwd>cactus</kwd>
				<kwd>bioactividad potencial</kwd>
			</kwd-group>
			<kwd-group xml:lang="en">
				<title>Keywords:</title>
				<kwd>microorganisms</kwd>
				<kwd>cacti</kwd>
				<kwd>potential bioactivity</kwd>
			</kwd-group>
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				<ref-count count="96"/>

			</counts>
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	<body>
		<sec sec-type="intro">
			<title>Introducción</title>
			<p>La microbiología es una de las áreas más importantes de las ciencias naturales al
				permitir conocer a los microorganismos y sus funciones en el balance ecológico
				terrestre, especialmente de los que forman asociaciones entre ellos y con la mayor
				parte de los macroorganismos. La genómica, proteómica y metabolómica, junto con los
				métodos bioquímicos y microbiológicos clásicos, posibilitan un mejor estudio de las
				complejas redes e interacciones de los microorganismos con su ambiente (<xref
					ref-type="bibr" rid="B50">Maldonado-Carmona <italic>et al</italic>.,
				2019</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B39">He <italic>et al</italic>.,
				2020</xref>). Algunos de estos microorganismos son algas, bacterias y hongos
				endófitos (<xref ref-type="bibr" rid="B89">Suryanarayanan, 2013</xref>). </p>
			<p>La etimología de la palabra endófito se deriva del griego <italic>endon</italic>
				(dentro) y <italic>phyton</italic> (planta) y se refiere a microbiomas que se alojan
				en el tejido interno de una planta (raíz, flor, tallo, frutos o semillas) por
				transmisión vertical (hacia la descendencia) u horizontal (no es por la descendencia
				del huésped), y que establecen una variedad de interacciones biológicas con su
				fitohospedero según el estado fisiológico de la planta, ya sea por factores
				ambientales (temperatura, pH, disponibilidad de nutrimentos) o la etapa de
				desarrollo de ambos; se les encuentra como patógenos latentes, mutualistas,
				comensales, residentes temporales o saprófitos latentes (<xref ref-type="bibr"
					rid="B23">Davis &amp; Shaw, 2008</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B89"
					>Suryanarayanan, 2013</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B94">Yadav,
				2021</xref>). Debido al avance en los estudios moleculares, se han secuenciado una
				gran cantidad de endófitos que no se han podido cultivar ni aislar (<xref
					ref-type="bibr" rid="B21">Conn &amp; Franco, 2004</xref>; <xref ref-type="bibr"
					rid="B59">Pereira, Ibáñez, Rosenblueth, Etcheverry &amp; Martínez-Romero,
					2011</xref>), por lo que se ha propuesto una definición más apropiada: los
				endófitos son un conjunto de genomas microbianos ubicados dentro de los órganos de
				las plantas (<xref ref-type="bibr" rid="B13">Bulgarelli <italic>et al</italic>.,
					2012</xref>). </p>
			<p>Al establecerse la relación entre los simbiontes (endófito y planta), ambos
				organismos producen metabolitos secundarios potencialmente tóxicos. Los endófitos
				pueden producir factores de virulencia, como exoenzimas y metabolitos fitotóxicos, y
				la planta puede generar defensas mecánicas y/o bioquímicas contra estos factores.
				Para que los simbiontes puedan coexistir se establece un antagonismo balanceado, el
				cual depende de la virulencia del endófito y de las variadas defensas de la planta.
				Estas defensas son influenciadas por factores ambientales y del desarrollo de ambos
				organismos. Se establece una relación endofítica si los factores de virulencia del
				microorganismo y las defensas de la planta están en equilibrio; pero si el hospedero
				presenta senescencia o se encuentra bajo estrés, el microorganismo se expresa como
				patógeno y en la planta se notan síntomas de enfermedad. Todas estas interacciones
				se explican en la <xref ref-type="fig" rid="f1">Figura 1</xref> (<xref
					ref-type="bibr" rid="B81">Schulz &amp; Boyle, 2006</xref>; <xref ref-type="bibr"
					rid="B43">Kusari, Hertweck &amp; Spiteller, 2012</xref>; <xref ref-type="bibr"
					rid="B78">Sánchez-Fernández <italic>et al</italic>., 2013</xref>).</p>
			<p>
				<fig id="f1">
					<label>Figura 1</label>
					<caption>
						<title>Diagrama de las interacciones entre un microbioma endófito y su
							planta hospedera. Modificado de <xref ref-type="bibr" rid="B81">Schulz
								&amp; Boyle (2006</xref>); <xref ref-type="bibr" rid="B67">Puri
									<italic>et al</italic>. (2017)</xref> y <xref ref-type="bibr"
								rid="B43">Kusari <italic>et al.</italic> (2012)</xref>.</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="1405-888X-tip-24-e328-gf1.jpg"/>
				</fig>
			</p>
			<p>Las bacterias y hongos endófitos (ByHE) colonizan tejidos sanos de una planta en
				algún estadio de su ciclo de vida, albergándose en espacios intercelulares,
				intracelulares y vasculares de los tejidos (<xref ref-type="bibr" rid="B93">Wang
						<italic>et al</italic>., 2006</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B4"
					>Barrales-Cureño &amp; De la Rosa, 2014</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B60"
					>Pereira, Azevedo &amp; Souza-Motta, 2017</xref>). Las ByHE más estudiados son
				los que pueden ser aislados de tejidos vegetales cuya superficie fue desinfectada y
				sus microorganismos fueron aislados. La importancia de la investigación de las ByHE
				ha sido tal que, se ha propuesto a la “endofitología”, como una línea de
				especialización en las ciencias biológicas (<xref ref-type="bibr" rid="B79"
					>Schouten, 2019</xref>). </p>
			<p>Se ha demostrado que la presencia de ByHE inducen la estimulación del crecimiento de
				las plantas mediante la fijación de nitrógeno (solamente bacterias), la producción
				de fitohormonas, el biocontrol de fitopatógenos en la raíz mediante la producción de
				agentes antimicrobianos, la producción de sideróforos, la inmunidad contra
				patógenos, herbívoros y estrés abiótico (<xref ref-type="bibr" rid="B82">Sessitsch,
					Howieson, Perret, Antoun &amp; Martínez-Romero, 2002</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B73">Rosenblueth &amp; Martínez-Romero, 2006</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B79">Schouten, 2019</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B95"
					>Yan <italic>et al</italic>., 2019</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B28"
					>Dini-Andreote, 2020</xref>). Particularmente en zonas áridas y semiáridas,
				algunos estudios demuestran que las ByHE son importantes para las plantas porque les
				ayudan a soportar el estrés causado por distintas condiciones ambientales adversas
				como la falta de agua y la alta salinidad, entre otras (<xref ref-type="bibr"
					rid="B37">Godínez, 2017</xref>).</p>
			<p>La familia Cactaceae es característica de zonas secas, pues son plantas suculentas
				nativas de ecorregiones áridas y semiáridas como desiertos, matorrales y selvas
				secas (<xref ref-type="bibr" rid="B18">Challenger &amp; Soberón, 2008</xref>). Es
				una de las familias más diversas en el mundo con aproximadamente 1,400 especies; de
				las que en México se han descrito 797 y el 69% son endémicas (Comisión Nacional para
				el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad-CONABIO, 2021). La sobrevivencia de los
				cactus en condiciones extremas de su hábitat se debe a sus adaptaciones morfológicas
				y fisiológicas: hojas modificadas en espinas y fotosíntesis de plantas con
				metabolismo ácido de las crasuláceas (CAM, por sus iniciales en inglés:
					C<italic>rassulacean Acid Metabolism</italic>), respectivamente (<xref
					ref-type="bibr" rid="B11">Bezerra, de Azevedo &amp; Souza-Motta, 2017</xref>).
				Su éxito evolutivo y ecológico también se debe a la interacción que tienen con ByHE
				al formar un holobionte (a saber, el individuo y su microbiota) que les permite
				tolerar el bajo contenido de nutrimentos, la presencia de metales pesados y el
				estrés hídrico y salino; convirtiéndolas en especies dominantes y diversas en
				hábitats con esas características (<xref ref-type="bibr" rid="B35">Fonseca-García
						<italic>et al</italic>., 2016</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B37"
					>Godínez, 2017</xref>). Por ejemplo, el cactus <italic>Cylindropuntia
					cholla</italic> (F.A.C.Weber) F.M.Knuth es colonizado en su zona radical por
				bacterias como <italic>Aarococcus terreus</italic> y hongos
					<italic>Agaricomycetes</italic> que le ayudan a crecer en estratos rocosos
					(<xref ref-type="bibr" rid="B64">Puente, Bashan, Lui &amp; Lebsky, 2004
				a</xref>). Ésta, junto con otras investigaciones se presentan en la <xref
					ref-type="table" rid="t1">Tabla I</xref>. </p>
			<p>
				<table-wrap id="t1">
					<label>Tabla I</label>
					<caption>
						<title>Especies de cactáceas y sus respectivos endófitos bacterianos y
							fúngicos, aislados de cada una de ellas. </title>
					</caption>
					<table border="1">
						<colgroup>
							<col/>
							<col span="2"/>
							<col/>
							<col/>
						</colgroup>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="center" rowspan="2">Especies de cactus</td>
								<td align="center" colspan="2">Endófitos (<italic>phyla</italic> o
									especies) </td>
								<td align="center">Región de<break/> estudio</td>
								<td align="center">Referencias</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">Bacterias</td>
								<td align="center">Hongos</td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify"> </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Carnegiea gigantea</italic> (Engelm.)
												Britton &amp; Rose <italic>Consolea</italic>
												sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia acanthocarpa</italic>
												(Engelm. &amp; J.M.Bigelow) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia arbuscula</italic>
												(Engelm.) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia bigelovii</italic>
												(Engelm.) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia califórnica</italic>
												(Torr. &amp; A.Gray) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia. echinocarpa</italic>
												(Engelm. &amp; J.M. Bigelow) F.M. Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia. fulgida</italic>
												(Engelm.) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia imbricata</italic> (Haw.)
												F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia multigeniculata</italic>
												(Clokey) Backeb
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia ramosissima</italic>
												(Engelm.) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia versicolor</italic>
												(Engelm. ex Toumey) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cylindropuntia whipplei</italic> (Engelm.
												&amp; J.M.Bigelow) F.M.Knuth
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Echinocereus engelmannii</italic> (Parry
												ex Engelm.) Lem.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>E. fasciculatus</italic> (Engelm. ex
												B.D.Jacks.) L.D.Benson
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Mammillaria viridiflora</italic> (Britton
												&amp; Rose) Boed.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Opuntia engelmannii</italic> Salm-Dyck ex
												Engelm.
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Alternaria</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Ascochyta</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Aureobasidium pullulans</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Chaetomium</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Cladosporium</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Coniothyrium</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Drechslera</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Epicoccum nigrum</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Fusarium</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Nigrospora oryzae</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Pestalotiopsis</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Phoma</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Stemphylium</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Ulocladium</italic> sp.
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="justify">Arizona, EUA.</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B88">Suryanarayanan, Wittlinger &amp;
										Faeth, 2005</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Cereus jamacaru</italic> D.C. </td>
								<td align="justify"><italic>Rhizobium</italic> sp.</td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify">Caatinga, Brasil</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B44">Leite <italic>et al</italic>.,
										2015</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Ferocactus acanthodes</italic> (Lem.)
									Britton &amp; Rose </td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify">Micorrizas sin especies determinadas </td>
								<td align="justify">Desierto de California, EUA.</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B22">Cui &amp; Nobel, 1992</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Mammillaria carnea</italic> Zucc. ex
									Pfeiff. </td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Actinobacteria</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Proteobacteria</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Acidobacteria</italic>
											</list-item>
										</list>
								</td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify">Altiplano mexicano</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B1">Aguirre-Garrido <italic>et
											al</italic>., 2012</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Mammillaria albicans</italic> subsp.
										<italic>fraileana</italic> (Britton &amp; Rose) D. R.
									Hunt</td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Bacillus megaterium</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Enterobacter sakazakii</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Pseudomonas putida</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Azotobacter vinelandii</italic>
											</list-item>
										</list>
								</td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify">Desierto Sonorense, México</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B49">López <italic>et al</italic>.,
										2012</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Melocactus zehntneri</italic> (Britton
									&amp; Rose) Luetzelb. </td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Enterobacter</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Burkholderia</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Pantoea</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Pseudomonas</italic> sp.
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify">Caatinga, Brasil</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B44">Leite <italic>et al</italic>.,
										2015</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Myrtillocactus geometrizans</italic>
									(Mart. ex Pfeiff.) Console</td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Proteobacteria</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Firmicutes</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Actinobacteria</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Acidobacteria</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Bacteroidetes</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Leclercia adecarboxylata</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Nocardiopsis prasina</italic>
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Agaricomycetes</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Agaricales</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Capnodiales</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Dothideomycetes</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Hypocreales</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Pleosporales</italic>
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="justify">Guanajuato, México</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B35">Fonseca-García <italic>et
											al</italic>., .2016</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Opuntia robusta</italic> J. C. Wendl. </td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Bacillus pumilus</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Staphylococcus hominis</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Psychrobacillus
												psychrodurans</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Aarococcus terreus</italic>
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Agaricomycetes</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Agaricales</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Capnodiales</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Dothideomycetes</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Hypocreales</italic>
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Pleosporales</italic>
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="justify">Guanajuato, México</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B35">Fonseca-García <italic>et
											al</italic>., 2016</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Pachycereus pringlei</italic> (S.Watson)
									Britton &amp; Rose </td>
								<td align="left">
									
										<list list-type="simple">
											<list-item>
												<italic>Klebsiella</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Acinetobacter</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Pseudomonas</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Bacillus</italic> sp.
											</list-item>
											<list-item>
												<italic>Staphylococcus</italic> sp.
											</list-item>
										</list>
									
								</td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify">Desierto Sonorense, México</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B66">Puente <italic>et al</italic>.,
										2009</xref>
								</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Stenocereus pruinosus</italic> (Otto ex
									Pfeiff.) Buxb. <italic>S. stellatus</italic> (Pfeiff.) Riccob. </td>
								<td align="justify"> </td>
								<td align="justify"><italic>Azospirillum
										brasilense</italic><break/><italic>A.
									lipoferum</italic></td>
								<td align="justify">Puebla, México</td>
								<td align="justify">
									<xref ref-type="bibr" rid="B53">Mascarúa-Esparza, Villa-González
										&amp; Caballero-Mellado, 1988</xref>
								</td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN1">
							<p>Modificado de <xref ref-type="bibr" rid="B35">Fonseca-García
										<italic>et al</italic>. (2016)</xref> y <xref
									ref-type="bibr" rid="B37">Godínez (2017)</xref>.</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>Los cactus cumplen la función de mantenimiento de los ambientes semiáridos y áridos a
				través de sus servicios ecosistémicos como la protección del suelo contra la erosión
				e infiltración de agua, alimento y refugio de animales (<xref ref-type="bibr"
					rid="B57">Pauca, Talavera, Villasante, Quispe &amp; Laura, 2018</xref>) y el
				nodricismo, cuando la planta nodriza protege a otros organismos al aportar
				microambientes más favorables (<xref ref-type="bibr" rid="B33">Flores &amp; Jurado,
					2003</xref>). Estas características de importancia ecológica han enfocado los
				estudios de estas especies en su conservación, principalmente proponiendo distintas
				formas de propagación y cultivo <italic>in vitro</italic>. En los últimos diez años,
				se ha incrementado el estudio sobre la actividad biológica de algunos de los
				metabolitos secundarios producidos por estas plantas, así como la identificación y
				actividad de su microbioma (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Bezerra <italic>et
						al</italic>., 2013</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B17">Chávez-Ambriz,
					Hernández-Morales, Cabrera-Luna, Luna-Martínez &amp; Pacheco-Aguilar,
					2016</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B12">Bulla <italic>et al</italic>.,
					2017</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B29">Eke <italic>et al</italic>.,
					2019</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B15">Camarena-Pozos, Flores-Núñez, López
					&amp; Partida-Martínez, 2021</xref>). </p>
			<p>Lo anterior, revela que es necesario sintetizar y analizar las publicaciones
				disponibles sobre endófitos en las cactáceas, para contribuir al desarrollo de esta
				reciente línea de investigación en México. Con esta revisión, se busca ordenar la
				información existente en este tema para conocer la situación actual sobre su
				conocimiento, destacando el uso de los organismos endófitos en la transferencia
				biotecnológica en áreas como la agricultura, la conservación y la salud. Para ello,
				se hizo la recopilación de información científica desde 1988 hasta enero 2021, sobre
				endófitos aislados de cactáceas, empleando las principales bases de datos en español
				e inglés. </p>
			<p><bold>Bacterias endófitas</bold></p>
			<p>Las bacterias endófitas son microorganismos que habitan en las plantas y se estima
				que existe una alta diversidad de estas (<xref ref-type="bibr" rid="B73">Rosenblueth
					&amp; Martínez-Romero, 2006</xref>). Según la región donde se encuentre la
				planta hospedera y de sus propias características, puede albergar más de una especie
				y en diferentes cantidades ocasionando en ellas, principalmente, efectos como: a)
				aumento en su capacidad de absorción de nutrimentos del suelo por el incremento y
				desarrollo de raíces, que ayudan a la solubilización de fosfatos y a la fijación
				biológica de nitrógeno (<xref ref-type="bibr" rid="B45">Li, Wang, Chen &amp; Chen,
					2008</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B79">Schouten, 2019</xref>) y b)
				establecimiento de una relación mutualista que le confiere protección contra
				factores bióticos y abióticos adversos (<xref ref-type="bibr" rid="B79">Schouten,
					2019</xref>). </p>
			<p>Particularmente hay bacterias endófitas solubilizadoras de fosfato (BSF) orgánico e
				inorgánico (<xref ref-type="bibr" rid="B38">Goldstein, Lester &amp; Brown,
					2003</xref>), las cuales generalmente secretan ácidos orgánicos (<xref
					ref-type="bibr" rid="B92">Wan &amp; Wong, 2004</xref>) como el butanoico,
				etanoico, metanoico y propanoico que solubilizan fosfatos minerales (<xref
					ref-type="bibr" rid="B56">Paredes-Mendoza &amp; Espinosa-Victoria, 2010</xref>).
				El mecanismo básico de las BSF para transformar el fósforo insoluble a una forma
				soluble, es romper los enlaces de P con iones metálicos de Al, Fe y Ca (<xref
					ref-type="bibr" rid="B70">Restrepo-Correa, Pineda-Meneses &amp; Ríos-Osorio,
					2017</xref>).</p>
			<p>Otras bacterias especializadas son las fijadoras de nitrógeno, que junto con las
				cianobacterias y las actinobacterias, forman un grupo único de microorganismos
				capaces de fijar este elemento químico además de producir metabolitos secundarios
					(<xref ref-type="bibr" rid="B90">Swarnalakshmi, Senthilkumar &amp; Ramakrishnan,
					2016</xref>). Estos microorganismos primero reducen el nitrógeno hasta una forma
				utilizable mediante la fijación biológica de nitrógeno (FBN), y después lo combinan
				o fijan en la forma de iones amonio. El proceso de FBN mediado por el complejo
				nitrogenasa, hace asimilable el nitrógeno atmosférico para otros organismos (<xref
					ref-type="bibr" rid="B7">Bellenger, Darnajoux, Zhang &amp; Kraepiel,
				2020</xref>). Específicamente, las bacterias fijadoras de nitrógeno pueden ser: 1)
				simbióticas endófitas, que producen nódulos en diferentes especies de leguminosas
				como las del género <italic>Rhizobium,</italic> y <italic>Frankia,</italic>
				asociadas con Betulaceae, Casuarinaceae y Rhamnaceae, entre otras familias de
				plantas y 2) de vida libre, como los géneros <italic>Azotobacter, Azospirillum,
					Bacillus</italic> y <italic>Clostridium</italic> (<xref ref-type="bibr"
					rid="B67">Puri, Padda &amp; Chanway, 2017</xref>; <xref ref-type="bibr"
					rid="B87">Soumare <italic>et al</italic>., 2020</xref>). </p>
			<p>También existen bacterias que promueven el crecimiento vegetal (PGPB por sus
				iniciales en inglés: <italic>Plant Growth Promoting Bacteria</italic>) mediante
				distintos mecanismos fisiológicos como: a) fijación de nitrógeno, b) solubilización
				de fósforo y c) producción de quitinasas, fitohormonas, glucanasas, sideróforos,
				compuestos orgánicos volátiles y antibióticos (<xref ref-type="bibr" rid="B62"
					>Pitiwittayakul &amp; Tanasupawat, 2020</xref>). Particularmente en zonas áridas
				y semiáridas, <xref ref-type="bibr" rid="B42">Kobayashi, Reedy, Bick &amp; Oudemans
					(2002)</xref> demostraron que las PGPB son muy importantes para el
				establecimiento de muchas especies de plantas. </p>
			<p><bold>Bacterias endófitas de las cactáceas</bold></p>
			<p>A pesar de que las PGPB son esenciales para el establecimiento de plantas en zonas
				áridas y semiáridas, falta más investigación sobre su presencia en las cactáceas.
					<xref ref-type="bibr" rid="B48">Lima, Weber, Correia, Soares &amp; Senabio
					(2015)</xref> identificaron en la cactácea columnar <italic>Cereus
					jamacaru</italic> DC., cepas bacterianas como <italic>Rhizobium</italic>,
					<italic>Burkholderia, Enterobacter, Pseudomonas</italic> y
					<italic>Pantoea</italic>, que no aumentaron significativamente la biomasa del
				cactus durante seis meses de cultivo, sin embargo, estas bacterias mostraron una
				posible actividad solubilizadora de fosfatos.</p>
			<p>Por otro lado, <xref ref-type="bibr" rid="B36">Fonseca-García, Desgarennes,
					Flores-Núñez &amp; Partida-Martínez (2018)</xref> analizaron el microbioma de
				plantas CAM, con una separación entre los microorganismos presentes en las
				siguientes zonas: a) rizosfera, b) endosfera radicular, c) endosfera del tallo y d)
				filosfera (partes aéreas de las plantas). Las cactáceas que estudiaron fueron
					<italic>Myrtillocactus geometrizans</italic> (Mart. ex Pfeiff.) Console y
					<italic>Opuntia robusta</italic> J. C. Wendl. Los linajes de las bacterias y las
				arqueas encontrados en ambas especies fueron Actinomycetales, Bacillales,
				Burkholderiales, Enterobacteriales, Pseudomonadales, Rhizobiales, Sphingobacteriales
				y Xanthomonadales, entre otros. De acuerdo con la diversidad de estos linajes, se
				determinó que uno de los factores que influyen en la composición bacteriana de estas
				plantas es la zona de las plantas de donde provienen, ya que la diversidad
				microbiana fue mayor en la rizosfera, y menor en la endosfera. </p>
			<p><bold>Hongos endófitos</bold>
			</p>
			<p>Los hongos endófitos son microorganismos que colonizan los tejidos vivos internos de
				las plantas y pueden contribuir a la protección de su hospedera contra factores: a)
				bióticos como patógenos y herbívoros, b) abióticos como el estrés salino y térmico o
				la presencia de metales (<xref ref-type="bibr" rid="B68">Ramos-Garza <italic>et
						al</italic>., 2016</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B95">Yan <italic>et
						al</italic>., 2019</xref>). También, se consideran hongos endófitos a los
				que en alguna etapa de su ciclo de vida, subsisten en su hospedera sin producir
				síntomas de enfermedad (<xref ref-type="bibr" rid="B61">Petrini, 1991</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B63">Porras-Alfaro &amp; Bayman, 2011</xref>). Los espacios
				intercelulares y las conexiones apoplásticas son el nicho primordial de estos
				hongos, en donde se alimentan de los nutrimentos que circulan por los haces
				vasculares de las plantas que habitan (<xref ref-type="bibr" rid="B75">Saikkonen,
					Faeth, Helander &amp; Sullivan, 1998</xref>).</p>
			<p>Algunos estudios como el de <xref ref-type="bibr" rid="B80">Schulz, Römmert, Dammann,
					Aust &amp; Strack (1999)</xref> demuestran que, a veces, la condición saprófita
				del hongo endófito que se hospeda en ciertos árboles cambia a efectos negativos
				cuando la planta se vuelve susceptible al presentar desórdenes nutricionales o
				estrés hídrico y el hongo la puede invadir. De tal forma<bold>,</bold> que existen
				hongos “endófitos temporales” o “patógenos latentes” (<xref ref-type="bibr"
					rid="B51">Márquez, Bills, Herrero &amp; Zabalgogeazcoa, 2012</xref>), al
				considerar que la latencia se refiere a infecciones “letargadas” y asintomáticas por
				algún tiempo. Estos hongos pasarían de su estado quiescente a patogénico cuando las
				condiciones resulten propicias para el huésped y/o desfavorables para la planta. Hay
				ocasiones en las que bajo determinadas condiciones ambientales, un hongo endófito
				puede comportarse como patógeno en otra condición ambiental dentro de la misma
				hospedera u en otra distinta (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Begoude, Slippers,
					Wingfield &amp; Roux, 2011</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B26">Delaye,
					García-Guzmán &amp; Heil, 2013</xref>).</p>
			<p>La protección del hongo a su hospedera se puede realizar por medio de tres
				mecanismos: 1) directo, a través de enzimas y/o metabolitos secundarios con acción
				anti-patógena, originados en el hongo; 2) indirecto, inducen o aumentan la expresión
				de los mecanismos de defensa fisiológicos o químicos inherentes a su hospedera; y 3)
				ecológico, mediante la depredación, el hiperparasitismo y la ocupación del nicho
				ecológico (<xref ref-type="bibr" rid="B78">Sánchez-Fernández <italic>et
					al</italic>., 2013</xref>).</p>
			<p><bold>Hongos endófitos de las cactáceas</bold></p>
			<p>Uno de los géneros más estudiados de la familia Cactaceae, por su diversidad e
				importancia económica, es <italic>Opuntia</italic>. Por ejemplo, <xref
					ref-type="bibr" rid="B69">Ratnaweera, de Silva, Williams &amp; Andersen
					(2015)</xref> analizaron la actividad antimicrobiana de los hongos endófitos del
				cactus invasivo <italic>Opuntia dillenii</italic> (Ker Gawl.) Haw. e identificaron
				dos especies: <italic>Aspergillus niger</italic> y <italic>Fusarium</italic> sp., la
				primera con mayor colonización en los cladodios del cactus y la segunda en los
				pistilos de sus flores. El endófito <italic>Fusarium</italic> sp. mostró mejor
				acción antimicrobiana que <italic>A. niger</italic> contra <italic>Bacillus
					subtilis</italic> y <italic>Staphylococcus aureus</italic>, lo cual se atribuye
				al compuesto identificado mediante cromatografía como equisetina (<xref
					ref-type="bibr" rid="B69">Ratnaweera <italic>et al.,</italic> 2015</xref>).</p>
			<p>Para otras especies de cactáceas, <xref ref-type="bibr" rid="B10">Bezerra <italic>et
						al</italic>. (2013)</xref> identificaron 59 <italic>taxa</italic> de hongos
				endófitos del cactus columnar <italic>Cereus jamacaru</italic> del bosque tropical
				seco brasileño. Las especies de hongos dominantes fueron <italic>Cladosporium
					cladosporioides</italic> y <italic>Fusarium oxysporum</italic>; seguidas de
					<italic>Acremonium implicatum, Aureobasidium pullulans, Trichoderma viride,
					Chrysonilia sitophila</italic> y <italic>Aspergillus flavus</italic>. Por
				primera vez se registraron 47 especies como hongos endófitos de una cactácea, lo
				cual sugiere que <italic>C. jamacaru</italic> alberga una comunidad fúngica
				altamente diversa. Las curvas de acumulación de especies demuestran que, según los
				autores, el estudio subestima la diversidad de endófitos; por lo que sugieren
				realizar muestreos más exhaustivos. </p>
			<p>El mencionado trabajo de <xref ref-type="bibr" rid="B36">Fonseca-García <italic>et
						al</italic>. (2018)</xref>, reporta varios linajes de hongos endófitos del
				cactus columnar <italic>Myrtillocactus geometrizans</italic> y el nopal
					<italic>Opuntia robusta,</italic> como Botryosphaeriales, Capriodiales,
				Chaetosphaeriales, Dothideomycetes, Hypocreales y Pleosporales, entre otros. Los
				distintos ensambles de estos hongos parecen estar influenciados por la biogeografía
				de sus hospederas, pues la diversidad fúngica varió según la ubicación de los
				cactus; resultando dos grupos principales: los estadounidenses y los mexicanos. Otro
				factor importante que podría explicar la diferencia de los ensambles de la endosfera
				del tallo, fue la época del año, ya que en la temporada lluviosa no se registraron
				los linajes que se presentaron durante la época seca, o bien fueron menos
				abundantes.</p>
			<p><bold>Usos y aplicaciones de algunos endófitos de cactáceas</bold></p>
			<p>La investigación sobre los endófitos de las cactáceas es escasa y más aún su efecto
				en otros organismos, sus hospederas o su bioactividad en general. A continuación, se
				describen aplicaciones potenciales basadas en estudios de endófitos hallados en
				estas y otras especies de plantas, cuya actividad ha sido probada experimentalmente
				y/o escalada a nivel productivo.</p>
			<p><bold>Crecimiento y desarrollo de plantas</bold></p>
			<p>
				<xref ref-type="bibr" rid="B64">Puente <italic>et al</italic>. (2004 a)</xref>
				demostraron que algunas bacterias endófitas (<italic>Bacillus
					chitinolyticus</italic>, <italic>Citropbaacter</italic> sp., <italic>Pseudomonas
					putida</italic>) de la cactácea conocida como cardón o <italic>Pachycereus
					pringlei</italic> (S.Watson) Britton &amp; Rose, pueden disolver fósforo y
				transformarlo en formas asimilables para las plantas. Otras bacterias aisladas de la
				misma especie de cactus, son capaces de degradar roca (<italic>Azospirillum
					brasilense</italic>, <italic>Bacillus pumilus</italic>) y fijar nitrógeno
				atmosférico (<italic>Bacillus subtilis</italic>). Estas capacidades fisiológicas
				pueden estar relacionadas con el establecimiento de plantas en estratos rocosos
					(<xref ref-type="bibr" rid="B65">Puente, Li &amp; Bashan, 2004 b</xref>). </p>
			<p>Asimismo, <xref ref-type="bibr" rid="B49">López, Tinoco-Ojanguren, Bacilio, Mendoza
					&amp; Bashan (2012)</xref> trabajaron con el cactus mexicano <italic>Mammillaria
					albicans</italic> subsp. <italic>fraileana</italic> (Britton &amp; Rose) D. R.
				Hunt, aportando evidencia experimental de que la inoculación de bacterias endófitas
				nativas (especies que se encuentran en su área de distribución natural u original
				-histórica o actual- según su potencial de dispersión natural, y forman parte de las
				comunidades bióticas naturales del área) puede estimular el crecimiento del cactus.
				Esto mediante la movilización de elementos del sustrato rocoso de la planta como Na,
				P y Fe, lo cual puede incrementar su actividad fotosintética y la acumulación de
				biomasa. Los endófitos identificados por la secuenciación total del gen 16S rRNA,
				fueron 14 morfotipos; dentro de los que destacan <italic>Azotobacter
					vinelandii</italic> M2Per, <italic>Pseudomonas putida</italic> M5TSA y
					<italic>Bacillus megaterium</italic> M2PCa como degradadoras de rocas
				riodacitas. Además, los cactus inoculados con la variante de <italic>P.
					putida</italic>, mostraron más acumulación de nitrógeno total que los inoculados
				con la bacteria fijadora de nitrógeno control. </p>
			<p>Por otro lado, <xref ref-type="bibr" rid="B14">Camarena-Pozos, Flores-Núñez, López,
					López-Bucio &amp; Partida-Martínez (2019)</xref> aislaron de los cactus
					<italic>Opuntia robusta</italic> y <italic>Myrtillocactus geometrizans,</italic>
				bacterias endófitas de los phyla Actinobacteria, Firmicutes y Proteobacteria.
				Comprobaron que estas endófitas emiten compuestos orgánicos volátiles (ésteres,
				alcoholes, compuestos azufrados y nitrogenados) que influyen en el crecimiento y el
				desarrollo (longitud y número de raíces, biomasa, etc.) de algunas herbáceas como
					<italic>Arabidopsis thaliana</italic> (L.) Heynh. y <italic>Nicotiana
					benthamiana</italic> Domin. Por lo tanto, algunos de estos compuestos son
				moléculas prometedoras para la producción sostenible de cultivos en regiones áridas
				y semiáridas (<xref ref-type="bibr" rid="B14">Camarena-Pozos <italic>et
					al.</italic>, 2019</xref>).</p>
			<p>
				<xref ref-type="bibr" rid="B34">Flores-Núñez <italic>et al</italic>. (2020)</xref>
				realizaron un estudio metagenómico de los endófitos de cactus del centro de México,
				donde señalan algunos de los mecanismos por los que algunas bacterias (encima y por
				debajo del suelo) sobreviven y colonizan plantas de ecosistemas áridos y semiáridos.
				Sus resultados indican que hay una diferencia funcional en los grupos microbianos
				del suelo, la rizosfera y la filosfera del cactus; agrupando así los linajes en
				grupos funcionales específicos: productores de biofilm, bacterias fototróficas y
				diazotróficas. Estos grupos influyeron en la diversidad microbiana y los autores
				sugieren que pueden intervenir en el crecimiento, la salud y la productividad de las
				cactáceas producidas en invernadero.</p>
			<p>Aunque <xref ref-type="bibr" rid="B40">Kavamura <italic>et al</italic>. (2013)</xref>
				aislaron 48 cepas bacterianas como <italic>Bacillus, Brevibacillus,
					Cellulosimicrobium, Enterobacter, Paenibacillus, Pantoea</italic> y
					<italic>Virgibacillus</italic> de la rizosfera de los cactus <italic>Cereus
					jamacaru, Melocactus</italic> sp. y <italic>Pilosocereus gounellei</italic>
				(F.A.C.Weber ex K.Schum.) Byles &amp; G. D. Rowley, algunos de estos géneros
					(<italic>Bacillus, Enterobacter, Pantoea</italic>) también se han identificado
				como endófitos de cactáceas (<xref ref-type="bibr" rid="B65">Puente <italic>et
						al</italic>., 2004</xref> a; <xref ref-type="bibr" rid="B49">López
						<italic>et al</italic>., 2012</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B48">Lima
						<italic>et al</italic>., 2015</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B36"
					>Fonseca-García <italic>et al</italic>., 2018</xref>). El 65% de esas cepas
				bacterianas crecieron en un medio con reducida disponibilidad de agua y un 65%
				produjeron exopolisacáridos. En el mismo estudio se inocularon algunas de estas
				bacterias en plantas de <italic>Zea mays</italic> L. y solamente tres cepas de
					<italic>Bacillus</italic> sp. (LMA3, LMA42 y LMA52) y una de
					<italic>Pantoea</italic> sp. (LMA28), el resultado fue un aumento significativo
				del área foliar del maíz en comparación con las plantas no inoculadas con las
				bacterias. De estas, en las plantas de maíz, solo la cepa LMA3 incrementó los tres
				parámetros analizados (área foliar, longitud del tallo y biomasa seca de brotes).
				Además, la inoculación de esta cepa parecía haber protegido a la planta contra los
				efectos negativos de la desecación (<xref ref-type="bibr" rid="B40">Kavamura
						<italic>et al</italic>., 2013</xref>).</p>
			<p>
				<xref ref-type="bibr" rid="B40">Kavamura <italic>et al</italic>. (2013)</xref>
				también cuantificaron: a) la producción de ácido indolacético en las cepas
				bacterianas que aislaron de la rizosfera de los cactus brasileños, con valores
				superiores a 51 μg mL<sup>-1</sup> para el 4% de ellas, y b) la solubilización de
				Ca-P que fue alta para el 6% de estas endófitas. Al inocular estas cepas en plantas
				de <italic>Z. mays</italic>, la producción del ácido indolacético de las bacterias
				se correlacionó positivamente con la longitud del tallo y con la solubilización del
				fósforo en las plantas de maíz. El ácido indolacético es una fitohormona reguladora
				de la división celular, formación de raíces y el crecimiento. Actualmente este ácido
				es de las auxinas más usadas con fines agrícolas y se sintetiza químicamente,
				causando contaminación del entorno donde se produce y se usa, por lo que se buscan
				métodos responsables ambientalmente para su obtención (<xref ref-type="bibr"
					rid="B3">Ayala <italic>et al</italic>., 2020</xref>). </p>
			<p>Recientemente, <xref ref-type="bibr" rid="B15">Camarena-Pozos <italic>et al.</italic>
					(2021)</xref> identificaron compuestos volátiles (terpenos, alcoholes, ésteres,
				cetonas) en hongos endófitos de <italic>O. robusta</italic> y <italic>M.
					geometrizans</italic>, que en su mayoría son producidos por las clases
				Sordariomycetes, Eurotiomycetes y Dothiomycetes. Algunos de los compuestos aislados
				como el canfeno y el benzoato de bencilo, tuvieron un efecto positivo en el
				crecimiento de las raíces y en general de la biomasa de la herbácea
					<italic>Arabidopsis thaliana.</italic></p>
			<p><bold>Incremento en la germinación de semillas y la floración</bold>
			</p>
			<p>
				<xref ref-type="bibr" rid="B17">Chávez-Ambriz <italic>et al</italic>. (2016)</xref>
				obtuvieron aislados bacterianos de la rizosfera de <italic>Mammillaria
					magnimamma</italic> Haw. y <italic>Coryphantha cornifera</italic> (DC.) Lem.,
				pertenecientes al género <italic>Bacillus</italic>. Todas las bacterias aumentaron
				la germinación de las semillas hasta un 34.3% más, con respecto a las semillas no
				inoculadas con los bacilos. También se mostró un efecto positivo sobre la floración
				del cactus al inocular una de estas bacterias en plantas de <italic>Mammillaria
					zeilmanniana</italic> Boed.; ya que, en un par de meses dentro del período de un
				año, aumentó hasta un 31% el número de plantas en floración con respecto a las
				plantas sin bacterias inoculadas. Esto sugiere que la inoculación de estas
				rizobacterias podría usarse en programas de conservación de especies de cactáceas en
				alguna categoría de riesgo o para el mantenimiento de sus poblaciones (<xref
					ref-type="bibr" rid="B17">Chávez-Ambriz <italic>et al</italic>.,
				2016</xref>).</p>
			<p><bold>Control de plagas</bold></p>
			<p>
				<xref ref-type="bibr" rid="B85">Silva-Hughes <italic>et al.</italic> (2015)</xref>
				encontraron en el cactus <italic>Opuntia humifusa</italic> (Raf.)
					Raf<italic>.,</italic> una especie de hongo endófito (<italic>Biscogniauxia
					mediterranea</italic>) que demostró tener una moderada actividad antifúngica, al
				menos en fase experimental, contra el patógeno <italic>Phomopsis obscurans</italic>
				que causa el tizón en las hojas de la fresa. Probablemente en otras cactáceas
				existan más hongos endófitos con estos efectos; puesto que se ha demostrado la
				existencia de los mismos en plantas como pastos, que pueden actuar como agentes de
				biocontrol de ciertos insectos (<xref ref-type="bibr" rid="B19">Clay, 1989</xref>).
				En cuanto a las bacterias, <xref ref-type="bibr" rid="B83">Shahid <italic>et
						al</italic>. (2017)</xref> aislaron cepas de <italic>Pseudomonas
					aurantiaca</italic> de un cactus paquistaní, en las que identificaron
				metabolitos secundarios como la fenazina-1-ácido carboxílico, que mostró una función
				antifúngica en plantas de trigo.</p>
			<p><bold>Tolerancia a la sequía</bold></p>
			<p>Recientemente, <xref ref-type="bibr" rid="B29">Eke <italic>et al</italic>.
					(2019)</xref> aislaron 18 especies de bacterias del cardón silvestre
					<italic>Euphorbia trigona</italic> Mill, pertenecientes a 13 géneros como
					<italic>Bacillus, Lysinibacillus, Enterobacter, Stenotrophomonas,
					Lelliottia</italic> y <italic>Pseudomonas.</italic> Al inocular estas endófitas
				en plantas de tomate, se produjeron cambios benéficos en las plantas en su estado
				oxidativo, la función estomática y del fotosistema II, la temperatura interna de la
				hoja y el contenido relativo de agua. Esto sugiere un efecto fisiológico positivo en
				el tomate por parte de las endófitas, contra el estrés por humedad. Así, en este
				estudio los autores proponen usar la cepa de <italic>Bacillus
					amyloliquefaciens</italic> como bioinoculante de bajo costo para contrarrestar
				los problemas de sequía y elevar la producción de ciertos cultivos, como por ejemplo
				el tomate donde fue probada la bacteria. En el mismo trabajo, se identificó por
				primera vez a <italic>Bacillus xiamenensis</italic> como endófito de una planta. A
				pesar de que las bacterias fueron aisladas de <italic>E. trigona</italic>, que no es
				una cactácea pero sí una suculenta característica de hábitats secos, podría
				compartir algunos endófitos con ciertos cactus. Esto tal y como lo demuestra un
				estudio con el hongo patógeno <italic>Fusarium oxysporum</italic> hallado por
				primera vez en <italic>Euphorbia mammillaris</italic> L. y que es típico de cactus
				como <italic>Astrophytum myriostigma</italic> Lem.<italic>, Epiphyllum
					hookeri</italic> Haw. y <italic>Cereus repandus</italic> (L.) Mill. (<xref
					ref-type="bibr" rid="B8">Bertetti, Ortu, Gullino &amp; Garibaldi,
				2017</xref>).</p>
			<p><bold>Recuperación de poblaciones y restauración de ecosistemas</bold>
			</p>
			<p>Varias especies de cactáceas se encuentran bajo alguna categoría de riesgo, debido
				principalmente a su comercio ilegal y la pérdida de su hábitat, por lo que los
				estudios de propagación <italic>in vitro</italic> son muy comunes para poder
				reintroducir las especies en su hábitat original. Por lo tanto, si se vincula este
				tipo de investigaciones con las de microorganismos endófitos, la probabilidad de
				recuperar y reestablecer poblaciones de cactáceas vulnerables a los distintos
				problemas ambientales, podría ser mayor. Incluso para establecer Unidades de Manejo
				para la conservación y aprovechamiento de la vida silvestre (UMA), debido a que
				estas plantas son altamente cotizadas por su importancia hortícola (<xref
					ref-type="bibr" rid="B74">Ruvalcaba-Ruiz, Rojas-Bravo &amp; Valencia-Botín,
					2010</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B37">Godínez, 2017</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B72">Rodríguez-Ruíz <italic>et al</italic>.,
				2018</xref>).</p>
			<p>Los estudios de PGPB en cactáceas indican que la relación entre endófitos y plantas
				del desierto podría ser más común (<xref ref-type="bibr" rid="B58">Pereg, de-Bashan
					&amp; Bashan, 2016</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B30">Enebe &amp; Babalola,
					2018</xref>). De modo que las bacterias endófitas de cactus pioneros como
					<italic>Mammillaria albicans</italic> subsp. <italic>fraileana</italic>,
					<italic>Opuntia cholla</italic>, <italic>Pachycereus pringlei</italic> y
					<italic>Stenocereus thurberi</italic> (Engelm.) Buxb., aportarían una ventaja
				ecológica sobre superficies de roca estéril porque les permitiría crecer donde otras
				plantas no pueden hacerlo (<xref ref-type="bibr" rid="B5">Bashan, Li, Lebsky, Moreno
					&amp; De Bashan, 2002</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B49">López <italic>et
						al.</italic>, 2012</xref>). Se ha demostrado que las semillas de muchas
				especies de plantas contienen diversidad de endófitos que les ayudan a germinar, lo
				que probablemente ocurra también en las cactáceas (<xref ref-type="bibr" rid="B47"
					>Li, Parmar, Sharma &amp; White, 2019</xref>). Esto es una línea de
				investigación actual para identificar y después usar los microorganismos para la
				restauración activa de los ecosistemas, a través de la colonización y
				establecimiento de plantas pioneras en suelos degradados o donde ya exista roca
				desnuda (<xref ref-type="bibr" rid="B66">Puente, Li &amp; Bashan, 2009</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B49">López <italic>et al</italic>., 2012</xref>).</p>
			<p><bold>Biorremediación como uso potencial</bold></p>
			<p>En cuanto a la bioactividad de las cactáceas y sus endófitos, falta mucho por
				analizar. Las funciones de fitoextracción de metales pesados y fitoestabilización de
				residuos tóxicos, han sido estudiadas en bacterias endófitas de familias vegetales
				distintas a la Cactaceae. Por ejemplo, las PGPB pueden servir como componentes
				valiosos en la biorremediación de suelos y aguas contaminados, así como en la
				revegetación y reforestación de tierras degradadas. La mayor utilidad potencial de
				estas bacterias radica en su estrecha asociación e influencia positiva en el
				crecimiento de las plantas. Por ejemplo, se ha demostrado que las PGPB endófitas y
				de la rizosfera aumentan la biomasa de ciertas plantas, y contribuye a la
				degradación de contaminantes orgánicos (<xref ref-type="bibr" rid="B24">De Bashan,
					Hernández &amp; Bashan, 2012</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B46">Li, Wei,
					Shen &amp; Zhou, 2012</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B67">Puri <italic>et
						al</italic>., 2017</xref>). </p>
			<p>Por otro lado, existen hongos que degradan colorantes de aguas residuales a través de
				exoenzimas o por bioabsorción (<xref ref-type="bibr" rid="B16">Cardona, Osorio &amp;
					Quintero, 2009</xref>). Algunas de esas enzimas son lacasas provenientes de
				hongos endófitos y no endófitos, demostrándose su potencial para degradar tintes de
				origen industrial (<xref ref-type="bibr" rid="B12">Bulla <italic>et al</italic>.,
					2017</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B9">Bettin <italic>et al</italic>.,
					2019</xref>). Particularmente, <xref ref-type="bibr" rid="B91">Tochhawng,
					Mishra, Passari &amp; Singh (2019)</xref> compilaron al menos cinco hongos
				endófitos con reportes de biodegradación de tintes sintéticos, como
					<italic>Marasmius cladophyllus, Myrothecium verrucaria</italic> y
					<italic>Phlebia formosus</italic>. </p>
			<p>
				<xref ref-type="bibr" rid="B55">Muthezhilan, Vinoth, Gopi &amp; Jaffar Hussain
					(2014)</xref> purificaron parcialmente lacasas de distintas cepas de hongos
				endófitos y encontraron que la de <italic>Fusarium</italic> sp. puede degradar los
				tintes textiles utilizados, más que las otras cepas analizadas. Este género de hongo
				endófito ya ha sido identificado en algunas cactáceas, como se mencionó en párrafos
				anteriores (<xref ref-type="bibr" rid="B10">Bezerra <italic>et al</italic>.,
					2013</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B69">Ratnweera <italic>et al</italic>.,
					2015</xref>; <xref ref-type="bibr" rid="B8">Bertetti <italic>et al</italic>.,
					2017</xref>); por lo tanto, se sugiere que sería posible aislar una enzima o
				compuesto similar a la lacasa en esas u otras especies de cactus. Además, la enzima
				usada por <xref ref-type="bibr" rid="B55">Muthezhilan <italic>et al.</italic>
					(2014)</xref> fue aislada de hongos endófitos de plantas provenientes de dunas
				costeras, un ecosistema donde puede haber cactus como <italic>Mammillaria
					gaumeri</italic> (Britton &amp; Rose) Orcutt que es endémica de matorrales de
				dunas costeras y bosques caducifolios secos tropicales de Yucatán (<xref
					ref-type="bibr" rid="B31">Ferrer-Cervantes <italic>et al</italic>.,
				2012</xref>). </p>
			<p><bold>Potencial uso farmacológico</bold></p>
			<p>Hay evidencia de que algunas especies de cactus producen metabolitos secundarios con
				beneficios médicos como antiinflamatorios y anticancerígenos (<xref ref-type="bibr"
					rid="B84">Shedbalkar, Adki, Jadhav &amp; Bapat, 2010</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B76">Salazar <italic>et al</italic>., 2011</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B25">De Castro <italic>et al</italic>., 2012</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B41">Kim, Jho, Choi &amp; Nam, 2013</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B96">Zareisedehizadeh, Tan &amp; Koh, 2014</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B71">Ríos-León, Fuertes-Ruiton, Arroyo &amp; Ruiz,
					2017</xref>). Asimismo, se han identificado en algunas cactáceas, bacterias
				endófitas como <italic>Pseudomonas</italic>, género del que ciertas especies
				producen metabolitos secundarios de los que se han aislado compuestos como: 1)
				antibióticos (<xref ref-type="bibr" rid="B86">Singh, Shrivastava, Yadav &amp;
					Srivastava, 2020</xref>); 2) emomicinas, una familia relativamente nueva de
				antibióticos de naturaleza lipopeptídica con acción antifúngica (<xref
					ref-type="bibr" rid="B54">Miller <italic>et al</italic>., 1998</xref>; <xref
					ref-type="bibr" rid="B77">Samad, Antonielli, Sessitsch, Compant &amp; Trognitz,
					2017</xref>); y 3) ácido bórico y 2-amino-3quinolincarbonitrilo, cuyo efecto
				resultó antibacteriano (<xref ref-type="bibr" rid="B32">Fitriani, Ihsan &amp;
					Hamdiyati, 2015</xref>). Además, se ha demostrado actividad antibiótica de
				ciertos compuestos de <italic>P. fluorescens</italic> aislada del algodón (<xref
					ref-type="bibr" rid="B27">Devi, 2019</xref>). </p>
		</sec>
		<sec sec-type="conclusions">
			<title>Conclusiones</title>
			<p>Esta revisión evidencia que, hasta ahora, existen reportes de la presencia de
				endófitos en varias cactáceas. Algunos de esos trabajos sólo reconocen el
					<italic>phyllum</italic>, clase, orden o género de las bacterias u hongos
				endófitos encontrados en los cactus. De los 22 trabajos considerados en esta
				revisión, la mayoría (12 estudios) analizaron bacterias; mientras que la minoría (8
				publicaciones) se refieren a hongos, y solamente 2 de ellos, identifican bacterias y
				hongos. El 18% de los trabajos señala la actividad biológica de los endófitos en las
				mismas especies de cactáceas de las que fueron aislados, y otro 18% se refiere al
				efecto de los endófitos en algunas herbáceas o en un hongo patógeno del cultivo de
				la fresa. Dado que la mayoría de las publicaciones (13 trabajos) solamente registran
				la presencia de hongos y/o bacterias endófitas, es evidente la importancia de
				investigar su bioactividad e identificar los compuestos activos. Por otro lado,
				desde principios de este siglo se producen nuevos fármacos con compuestos activos
				producidos por microorganismos endófitos (<xref ref-type="bibr" rid="B52"
					>Martínez-Klimova, Rodríguez-Peña &amp; Sánchez, 2017</xref>). Así, existe la
				posibilidad de que alguna bacteria u hongo endófito de los cactus, generen
				compuestos químicos con propiedades medicinales. Incentivar la investigación en este
				sentido, contribuirá a lograr uno de los Objetivos de Desarrollo Sustentable de la
				Organización de las Naciones Unidas que es generar buena salud y bienestar, mediante
				la búsqueda de nuevos medicamentos de origen microbiano para combatir la resistencia
				a antibióticos y generar fármacos amigables con el ambiente (<xref ref-type="bibr"
					rid="B2">Akinsemolu, 2018</xref>). </p>
			<p>Finalmente, este trabajo revela la necesidad de continuar investigando a las
				cactáceas y sus endófitos no sólo para encontrar nuevas especies, sino tmabién usos
				con potencial aplicación para la conservación y el desarrollo sustentable. Asimismo,
				es necesario vincular los sectores académicos, empresariales y gubernamentales para
				que existan políticas públicas que fomenten la investigación y la transferencia
				biotecnológica.</p>
		</sec>
	</body>
	<back>
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			<title>Referencias</title>
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					<article-title>Beneficial effects of endophytic fungi colonization on
						plants</article-title>
					<source>Applied Microbiology and Biotechnology</source>
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				<mixed-citation>Zareisedehizadeh, S., Tan, C. H. &amp; Koh, H. L. (2014). A review
					of botanical characteristics, traditional usage, chemical components,
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							<given-names>H. L.</given-names>
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					<year>2014</year>
					<article-title>A review of botanical characteristics, traditional usage,
						chemical components, pharmacological activities, and safety of Pereskia bleo
						(Kunth) DC</article-title>
					<source>Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine</source>
					<volume>2014</volume>
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					<pub-id pub-id-type="doi">10.1155/2014/326107</pub-id>
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