Los seres vivos están constantemente expuestos a diversos tipos de estrés biótico y abiótico. Por su naturaleza sésil, estas situaciones estresantes son _I particularmente impactantes para las plantas que han desarrollado diversos y complejos mecanismos de adaptación y respuesta. La percepción de las condiciones estresantes, junto con la posterior transducción y amplificación de las señales percibidas, inicialmente alteran su metabolismo, pero también impactan en la expresión de los genes para asegurar su crecimiento y desarrollo. Los cambios a nivel transcripcional representan el paso final de complejas redes de vías de señalización que son activadas después de que la célula percibe una señal o estímulo. Aunque existen diferentes modificaciones postraduccionales que participan en las vías de transducción (Friso & van Wijk, 2015; Hashiguchi & Komatsu, 2017). Las señales se transmiten principalmente por diferentes componentes celulares hasta llegar al núcleo, a través de una serie de fosforilaciones y desfosforilaciones de diversas proteínas. La fosforilación de proteínas consiste en la adición de un grupo fosfato (PO₄^3-) desde el ATP a uno o varios residuos, comúnmente de serina, treonina o tirosina, de una proteína blanco. Esta modificación causa cambios conformacionales que tienen importantes efectos moduladores, incluyendo la activación/inhibición de la actividad enzimática, cambios en la localización subcelular o alteraciones en sus interacciones y su estabilidad, entre otras (Figura 1) (Olsen & Mann, 2013; Colcombet & Hirt, 2008).

Figura 1

Las reacciones de fosforilación son llevadas a cabo por las enzimas llamadas cinasas, entre las que destacan por su participación en múltiples procesos biológicos las llamadas cinasas activadas por mitógenos o MAPK (Mitogen-Activated Protein Kinases, por sus siglas en inglés). Las MAPK se encuentran en todos los eucariotes y son una de las vías de transducción de señales más antiguamente descritas. En las plantas, participan en la regulación de varios procesos fisiológicos como la percepción de las hormonas (Colcombet & Hirt, 2008) y la respuesta a diversos tipos de estrés (Mishra, Tuteja & Tuteja, 2006; Zhang & Klessig, 2001). A través de cascadas de MAPK, las células son capaces de responder a diversas condiciones adversas como las causadas por radiación, especies reactivas del oxígeno, sequía, heridas e infecciones por patógenos, altas o bajas temperaturas, y cambios en la osmolaridad, por mencionar algunas (Danquah, Zelicourt, Colcombet, & Hirt, 2014; Sinha, Jaggi, Raghuram, & Tuteja, 2011). Por otra parte, numerosos estudios han demostrado que prácticamente todos los reguladores del crecimiento vegetal, también conocidos como fitohormonas, como son las auxinas (AUX), el ácido abscísico (ABA), el ácido jasmónico (JA), el ácido salicílico (SA), el etileno (ET), los brasinoesteroides (BR) y las giberelinas (GA), ejercen su efecto regulador sobre el crecimiento y desarrollo de la planta, a través de cascadas de MAPK (Mishra et al., 2006; Smékalová, Doskočilová, Komis, & Samaj, 2013).

Arabidopsis thaliana L., es una planta dicotiledónea de la familia Brassicaceae, y un modelo de estudio que revolucionó las investigaciones en la biología molecular y el desarrollo vegetal, a la fecha suman más de 67,000 los trabajos en los que se ha utilizado (https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/). Entre las características que fomentaron el uso de Arabidopsis como organismo modelo destacan la facilidad para su cultivo en condiciones de laboratorio, por la disponibilidad de contar con protocolos de mutagénesis y métodos de selección de mutantes, además de un genoma pequeño con 5 cromosomas sobre los que se distribuyen alrededor de 25,000 genes en su mayoría de copia única, que ofrecen la posibilidad de transformarla genéticamente para regenerar plantas transgénicas estables, aunado al hecho de que es fácil mantener líneas homocigóticas estables debido a su baja tasa de entrecruzamiento (Woodward & Bartel, 2018). Adicionalmente, el genoma de Arabidopsis está totalmente secuenciado y el uso de técnicas de mutación dirigida mediante inserción de fragmentos de DNA, permitieron la identificación de la función de muchos de sus genes por genética reversa (Carneiro, Chacón-Madrid, Maciel & Zezzi, 2015). Finalmente, existen bancos de germoplasma encargados de recolectar, mantener y propagar las variantes genéticas de esta planta. Estas colecciones se pueden consultar en línea con la posibilidad de solicitar el material vegetal resguardado a través del The Arabidopsis Information Resource (https://www.arabidopsis.org/), donde también están disponibles varias herramientas bioinformáticas y bases de datos enfocadas a esta planta.

Sin lugar a duda, la generación de mutantes y su posterior caracterización fenotípica y molecular, representa la estrategia experimental más poderosa para establecer la función de un gen y su participación en un proceso determinado. De tal manera que, la mayor parte del conocimiento, si no todo, que se tiene sobre la función de las MAPK proviene de este tipo de investigaciones. Las MAPK operan mediante módulos de señalización conformados por miembros de tres familias de proteinas diferentes, denominadas MAPK, MEK o MAPKK (MAP cinasa cinasa) y MEKK o MAPKKK (MAP cinasa cinasa cinasa), que se activan de manera secuencial por la fosforilación de residuos de aminoácidos localizados en el llamado dominio de activación (Hamel et al., 2006). Asimismo, las interacciones entre las cinasas involucradas en una cascada están mediadas por sitios de acoplamiento en las propias enzimas y/o por proteínas de andamiaje externas (Bequette, Hind, Pulliam, Higgins & Stratmann, 2018). Una cascada de señalización inicia cuando las proteínas MEKK activadas (fosforiladas por un receptor con actividad cinasa o alguna proteína previamente fosforilada (Bai & Matton 2018), fosforilan un par de residuos de serina (S) y treonina (T) en el dominio de activación con la secuencia canónica S/T-X_3-5-S/T presente en las proteínas MEK. Posteriormente, estas MEK activan a las MAPK mediante la fosforilación de residuos de treonina (T) y tirosina (Y) en el dominio de activación canónico (T-X-Y) (Ichimura et al., 2002). Una vez activadas, los sustratos de las MAPK incluyen proteínas citoplásmicas y proteínas transmembranales, pero también se pueden translocar al núcleo, para fosforilar factores de transcripción y/o otros componentes de la maquinaria transcripcional, para afectar la expresión de diferentes genes (Figura 2) (Popescu et al., 2009). Por ejemplo, en respuesta a un incremento en los niveles de Metil-jasmonato (MeJA), un promotor de la senescencia, MPK6 promueve la escisión del extremo C-terminal de la proteína (ETHYLENE-INSENSITIVE 2) para que este se transloque al núcleo y promueva la acumulación del factor transcripcional EIN3 (Zhang, Liu, Chai, & Xin, 2016). Alternativamente, las MAPK también pueden fosforilar a MEK, MEKK y otras cinasas de proteínas (Brunet, Pagés & Pouysségur, 1994; Jiménez-Sánchez, Cid & Molina., 2007), creando un circuito de regulación que controla los incrementos o atenuaciones de la inducción de las mismas a las cascadas de MAPK (Ichimura et al., 2002). Este mecanismo de regulación por retrofosforilación podría operar en las plantas, donde la demostración de su operación ha sido elusiva. En este sentido, las interacciones directas, pero aparentemente independientes de la fosforilación, entre MPK4 y MEKK1 han sido reportadas (Suarez-Rodriguez et al., 2007; Ichimura et al., 1998).

Figura 2

En general en las plantas, la cantidad de genes que codifican para los miembros de la familia MEK es mucho menor que la de los miembros que forman parte de las familias MAPK y MEKK, lo que implica promiscuidad y redundancia en la actividad de este tipo de enzimas (Ichimura et al., 2002). A partir de la identificación de las MAPK en especies vegetales, durante la década de 1980, se descubrió que estas cascadas de señalización están involucradas en prácticamente todos los aspectos importantes de la vida vegetal y su interacción con el entorno (Chardin, Krapp, Schenk, Hirt & Colcombet, 2017; Colcombet & Hirt, 2008; Xu & Zhang, 2014; Zhang & Klessig, 2001; Pitzschke, Schikora & Hirt, 2009). En particular, en el genoma de Arabidopsis se han descrito 20 genes que codifican para MAPK, 10 para MEK y 80 para MEKK. Sin embargo, a la fecha solo se han estudiado en detalle algunos componentes de este tipo de enzimas en las plantas, y apenas ocho de las veinte MAPK han sido estudiadas a profundidad (Nakagami, Pitzschke & Hirt, 2005). Las MAPK de Arabidopsis mejor caracterizadas son MPK3, MPK4 y MPK6. Diversos estudios han demostrado que MPK3 y MPK6 están implicadas en el control de varias respuestas al estrés, en la regulación de algunos programas de desarrollo y que ambas están involucradas en las respuestas a fitohormonas (Liu & Zhang, 2004), a diversos estímulos externos (Asai et al., 2002) y a especies reactivas de oxígeno(Jalmi & Sinha, 2015; Bigeard & Hirt, 2018). Mientras que MPK4, es reconocida por participar en la respuesta a patógenos y en varios mecanismos de defensa (Thulasi Devendrakumar, Li & Zhang, 2018).

En Arabidopsis también se han descrito la composición de unos pocos módulos MAPK implicados en la respuesta a diferentes estímulos. Por ejemplo, el módulo MEKK1-MKK4/5-MPK3/6 participa en la percepción y señalización de la respuesta inmune mediada por flagelina (Asai et al., 2002); el módulo MEKK1-MEK1/2-MPK4/6, se activa en respuesta a diferentes tipos de estrés (Teige et al., 2004); y el módulo MEKKK4-MEK4/5-MPK3/6, inicialmente identificado como regulador del desarrollo de los estomas (Wang, Ngwenyama, Liu, Walker & Zhang, 2007), parece ser que también participa en la regulación de los programas de desarrollo y morfología de la raíz y del embrión (López-Bucio et al., 2014).

Los reguladores del crecimiento vegetal, hormonas vegetales o fitohormonas, son substancias asociadas a procesos que se relacionan con el crecimiento, desarrollo y, de manera general, se encargan de mediar las respuestas al estrés y controlar las vías de organogénesis (Weyers & Paterson, 2001). Entre las principales asociadas al crecimiento, desarrollo y diferenciación son: las auxinas (AUX), que regulan la división y expansión celular, la diferenciación vascular, el desarrollo de las raíces laterales, la morfogénesis de la raíz primaria y la dominancia apical (Perrot-Rechenmann, 2010); las citocininas que estimulan e inducen a la proliferación y división celular en la parte aérea de la planta y la diferenciación en la raíz primaria, la elongación de las raíces, además de permitir el desarrollo fotomorfogénico mediante la inducción de la senescencia (Brenner & Schmülling 2012); las giberelinas que se encargan de promover la germinación, el alargamiento del tallo y la inducción de la floración (Gupta & Chakrabarty, 2013); y los brasinoesteroides (BR) que promueven la elongación celular, la germinación, la formación de los estomas y la senescencia (Guo, Li, Aluru, Aluru & Yin, 2013).

Otro grupo de fitohormonas se caracterizan por participar en la respuesta ante distintos tipos de estrés, entre las que están el ácido jasmónico (JA), que modula el desarrollo del polen y las respuestas a infecciones por patógenos (Babenko, 2015); el ácido salicílico (SA) que además de participar en el crecimiento y el desarrollo, está involucrado en los mecanismos de resistencia a fitopatógenos (Rivas-San Vicente & Plasencia, 2011), en las respuestas al estrés biótico y abiótico, así como en el control de la actividad fotosintética y la conductividad de los estomas en respuesta a la sequía (Nazar, Umar, Khan & Sareer, 2015). Por su parte, el etileno y el ácido abscísico (ABA) participan en procesos que tienen que ver con la maduración, así como la respuesta a distintos tipos de estrés abiótico (Jiang & Fu, 2000; Xing, Jia & Zhang, 2009).

De manera general una cascada de señalización comienza con la percepción de una señal por parte de un receptor, generalmente anclado a la membrana plasmática. Este evento desencadena diversas señales secundarias, como puede ser la síntesis de fitohormonas, que a su vez pueden ser la causa y consecuencia de la inducción de las cascadas de fosforilación mediadas por MAP cinasas (Khan & Hakeem, 2014). Hasta la fecha, existe un número limitado de ejemplos en los que se describe con detalle la participación de alguno de los componentes, efectores y/o sustratos de estas vías. La recopilación del conocimiento disponible sobre la relación funcional entre las cascadas de señalización medidas por MAPK y las fitohormonas es el principal objetivo de esta revisión.

A partir del primer reporte de la conexión entre las auxinas y las MAPK, en el que se demostró que estas hormonas son capaces de activar a dos MAPK en las células de tabaco (Mizoguchi et al., 1994); diversos estudios implicaron a distintas cascadas de MAPK en la regulación de la biosíntesis, transporte y transducción de señales de las auxinas (Tena & Renaudin, 1998; Mockaitis & Howell, 2000; Dai, 2006).

Señalización por auxinas: la proteína NKP1, es un miembro de la familia de las MAPKKK en Nicotiana tabacum y forma parte de una cascada de señalización que regula negativamente la expresión de los genes inducidos por auxinas. Los ortólogos de NKP1 en Arabidopsis: ANP1, ANP2 y ANP3, también son capaces de suprimir la señalización de las auxinas (Kovtun, Chiu, Tena & Sheen 2000). En respuesta a un aumento de los niveles de H₂O₂, ANP1/AtMKKK1 promueve la expresión de los genes AtMPK3 y AtMPK6, cuyos productos participan en la inhibición de diversos genes que son inducidos por las auxinas como GST6 (Glutathione S-transferase 6) y HSP18.2 (Heat shock protein 18.2) (Hirt, 1997). Aunado a ello, el análisis de una línea mutante de pérdida de función de la cinasa AtMPK12 (mpk12) demostró que esta mutación causa una respuesta hipersensible a las auxinas (Lee, Wang, Sritubtim, Chen & Ellis, 2009). Siendo esta cinasa identificada como un sustrato de IBR5 (Indole-3-Butyric acid-Response 5, por sus siglas en inglés), una fosfatasa implicada en la percepción de las auxinas (Lee et al., 2009).

Transporte polar de auxinas o PAT (Polar Auxin Transport, por sus siglas en inglés): se encuentra regulado por las cascadas de señalización de MAPK que afectan la expresión de diversos miembros de la familia PIN (Dai, 2006). Se reportó que AtMPK4, así como el módulo AtMKK7-AtMPK6 regulan la expresión y localización de las proteínas PIN en la membrana plasmática (Jia et al., 2016). Aunado a ello, el análisis de la línea mutante bud1 (bushy and dwarf 1, por sus siglas en inglés) una línea mutante sobreexpresora de AtMKK7, ocasiona defectos en el transporte de las auxinas; mientras que, la disminución de los niveles de AtMKK7 empleando RNA antisentido, resultó en una mejoría en el transporte de auxinas, indicando así que AtMKK7 es un regulador negativo de PAT (Dai, 2006) (Figura 3).

Figura 3

Por su parte, el módulo AtMKK2-AtMPK10 participa en la regulación del transporte de auxinas impactando en el patrón de venación de las hojas en Arabidopsis (Stanko et al., 2014).

Desarrollo de la planta: durante el proceso de expansión celular en la raíz primaria promovido por las auxinas, el módulo AtMKK3-AtMPK1-RBK1 (ROP-Binding protein Kinasel) modula la actividad GTPasa tipo Rho de las enzimas ROP4 y ROP6, alterando de manera negativa el crecimiento de la raíz (Enders, Frick & Strader, 2017). Mientras que, durante el desarrollo post-embrionario de este órgano, AtMKKK4 (YDA) y AtMPK6 están involucradas en el control de la división celular dependiente de las auxinas. Igualmente, los análisis de la mutante de pérdida de la función yda1 y el de una línea que sobre expresa esta enzima (ΔNydal), mostraron que ambas acumulan niveles elevados de auxinas, mostrando fenotipos de raíces pronunciados que resultan de divisiones celulares visiblemente desorientadas (Smékalová et al., 2014) (Figura 3).

Percepción y señalización extracelular de las auxinas: los receptores de tipo cinasa o RLK (Receptor Like Kinase, por sus siglas en inglés), denominados TMK1 y TMK4 (TRANSMEMBRANE KINASE1 y 4) regulan la formación del gancho apical¹ en Arabidopsis (Cao et al., 2019). Adicionalmente, un aumento en los niveles exógenos de las auxinas induce a la formación de raíces laterales en plantas del tipo silvestre, mientras que en las mutantes mkk4 y mkk5 o en la doble mutante tmk1/tmk4 este tratamiento no tiene efecto. Así mismo, las auxinas inducen a la fosforilación de AtMKK4/5 y AtMPK3/6, a través una vía en la que participan TMK1/4 (Huang et al., 2019) (Figura 3).

No hay una evidencia experimental que vincule directamente la respuesta a citocininas con módulos de MAPK. Sin embargo, los receptores de citocininas de Arabidopsis son muy similares a las proteínas cinasas de histidina que bien podrían activar alguna vía de MAP cinasas (Mishra et al., 2006). Como es el caso de CKI1, que es el primer receptor de citocininas identificado. Una línea que sobre expresa este receptor presenta los efectos característicos de la acción de las citocininas, lo que sugiere que la proteína actúa en la percepción, la regulación de los niveles o en una etapa temprana de la transducción de señales que controla la respuesta a esta fitohormona (Kakimoto, 1996). Otro receptor de citocininas, CRE1 (Cytokinin Responsel, por sus siglas en inglés), se autofosforila en respuesta a esta fitohormona, en un residuo de histidina conservado en su propio dominio receptor.

Este fosfato se transfiere a otras proteínas (AHP) que, finalmente, fosforilan a los factores de transcripción tipo B que inducen la expresión de diversos genes, como el de la ciclina D3 (CycD3), que regula la transición del ciclo celular de la fase G1 a S, y a los reguladores de respuesta del tipo A (ARR4 y ARR5, principalmente), que a su vez regulan negativamente la expresión de ocho genes inducibles por citocininas, ejerciendo así un control de retroalimentación negativa para mantener la homeostasis (D'Agostino & Kieber, 1999).

Otros dos reguladores de respuesta del tipo A, denominados ARR3 y ARR16 se inducen con el etileno, sugiriendo que existe un enlace entre las vías de transducción de señales del etileno y las citocininas. Como se sabe que las MAPK son reguladores importantes de la vía de señalización del etileno, se intuye que es probable que el etileno tenga un efecto negativo en la respuesta a las citocininas, probablemente a través de las cascadas de MAPK. Sin embargo, es posible que la inactivación de las MAPK aumente la sensibilidad de las células a las citocininas para inducir el crecimiento y desarrollo de la planta (Mishra et al., 2006). De hecho, en Arabidopsis, el receptor del etileno ETR1 y el osmosensorAHK1 son capaces de percibiry transmitir una señal para activar una cascada de MAPK que bien podría estar relacionada a las citocininas, sin embargo, esta especulación es algo que está pendiente de ser demostrado experimentalmente. En otros organismos, los sistemas de dos componentes, como el que opera en la respuesta a las citocininas, proporcionan un vínculo entre la detección de una señal ambiental y una cascada de señalización de MAPK (Hwang & Sheen, 2001). Estos sensores actúan como reguladores negativos, ya que su inactivación permite la transmisión de una señal. En el caso de las citocininas, la implicación de CKI1 y CRE1, sugiere que un sistema de dos componentes pueda activar la transducción de señales de las citocininas en Arabidopsis, en un proceso en el que bien podrían estar implicadas las cascadas de MAPK (Hwang & Sheen, 2001).

En la actualidad se ha establecido que las citocininas y las auxinas interactúan antagónicamente para regular varios procesos del desarrollo como el del meristemo apical de la raíz, el establecimiento del nicho de células madre durante la embriogénesis, la emergencia de raíces laterales y la iniciación de hojas (Perilli, Moubayidin & Sabatini, 2010). A la fecha, no se ha reportado la participación de MAPK en la interacción de estas fitohormonas, pero ya que estos módulos de señalización están claramente involucrados en la regulación de las respuestas a las auxinas, no sería sorprendente que en los próximos años se tengan evidencias al respecto.

Durante la inducción del proceso de des-etiolación, los factores transcripcionales que actúan negativamente, como los PIF (Phytochrome-Interacting Factors, pos sus siglas en inglés) que promueven el desarrollo escotomorfogénico² en condiciones de oscuridad, se degradan mediante la interacción directa con los fitocromos inducidos por la luz (Lee, 2015). En particular, se ha informado recientemente que los PIF están regulados por otras fitohormonas como las giberelinas o GA (Gibberelic Acid, por sus siglas en inglés) y los brasinoesteroides (BR) (De Lucas et al., 2008). El módulo AtMKK3-AtMPK6 participa en la señalización de la luz azul mediante un mecanismo que también depende de la actividad del factor de transcripción MYC2 (Sethi, Raghuram, Sinha, & Chattopadhyay 2014). El análisis de la mutante de pérdida de la función mpk6 demostró que su activación en respuesta a la luz depende de MKK3. Por su parte, la mutante mkk3 muestra insensibilidad a la luz roja e hipersensibilidad a GA (Lee, 2015) (Figura 3). En resumen, las giberelinas modulan las vías de señalización que son reguladas por la luz mediante la actividad del módulo AtMKK3-MPK6-MYC2 para controlar el programa de desarrollo escotomorfogénico.

El ácido jasmónico o JA (Jasmonic Acid, por sus siglas en inglés) es un importante regulador del crecimiento y desarrollo de las plantas, pero su papel más importante lo tiene en el control de las respuestas a diversos tipos de estrés biótico y abiótico (Hou, Ding & Yu, 2013). Aunque en Arabidopsis se reportó la relación que existe entre la señalización del JA y MAPK, pocos estudios han apoyado esta interacción. Sin embargo, sí se sabe que las MAPK regulan la biosíntesis del JA y la expresión de genes dependientes del mismo.

Respuesta a estímulos extracelulares: la exposición al JA induce la expresión y la actividad de MPK1 y MPK2 en las hojas de Arabidopsis (Ortiz-Masia, Perez-Amador, Carbonell & Marcote, 2007); mientras que, MPK2 y MPK9 regulan el mecanismo de cierre de los estomas-dependiente del JA mediante la participación de COI (COronative Insensitive1, por sus siglas en inglés), una proteína con caja F que funciona, junto con JAZ (Jasmonate Zim Domain, por sus siglas en inglés), como un correceptor del jasmonato (Khokon et al., 2015) (Figura 3). Por otra parte, AtMKK3 induce la expresión de diversos genes que también son regulados por el JA, como VSP1 (Vegetative Storage Protein 1, por sus siglas en inglés) y JR1 (Jacalin-Related Lectin 1, por sus siglas en inglés) (Takahashi et al., 2007) (Figura 3).

Desarrollo de la raíz: los factores transcripcionales AtMYC2/JASMONATE INSENSITIVE y ERF1 (Ethylene Response Factor 1, por sus siglas en inglés) regulan la expresión de diversos genes que son inducidos por el JA (Boter, Ruíz-Rivero, Abdeen & Prat, 2004). Mientras que el módulo AtMKK3-AtMPK6, regula negativamente la expresión de MYC2 dependiente del JA para permitir el crecimiento de la raíz (Figura 3) (Takahashi et al., 2007).

De manera similar al caso del JA, el ácido salicílico o SA (Salicylic Acid, por sus siglas en inglés) desempeña un papel importante mediando las respuestas de defensa ante patógenos, en la resistencia sistémica adquirida o SAR (System Acquired Resistence, por sus siglas en inglés) y las respuestas a diferentes tipos de estrés abiótico como la deficiencia de agua, la alta salinidad y el frío (Miura & Tada 2014). El incremento de la actividad de AtMPK3 en respuesta a altas concentraciones de ozono es inducida por el SA (Ahlfors et al., 2004). Asimismo, la actividad de AtMPK3 y AtMPK6 inducen la expresión de los genes PR1 y PAL, que son importantes para la síntesis del SA. En comparación, AtMPK4, además de ser un regulador negativo de las respuestas de defensa frente a patógenos, también actúa como un regulador negativo del SAR que está mediada por el SA (Petersen et al., 2000).

El análisis de la mutante por inserción de T-DNA mpk4, reveló que la pérdida de la función de esta proteína causa elevados niveles de SA, así como un incremento en la resistencia a patógenos y una reducción en la expresión de genes que son inducidos por el JA. Esto sugiere que AtMPK4 es un regulador negativo de la acumulación del SA, pero un regulador positivo de la vía del JA. También se ha demostrado que una MAPKKK del tipo CTR1 (Constitutive Triple Response1, por sus siglas en inglés), denominada EDR1 (Enhanced Disease Resistant1), forma parte del mismo módulo de respuesta que AtMPK4 (Frye, 2001). También se observó que MKS1 (MAP Kinase Substrate1, por sus siglas en inglés), un sustrato de AtMPK4, es necesario para la resistencia a patógenos en la mutante mpk4, así como que su sobreexpresión en plantas del tipo silvestre es suficiente para activar la resistencia a patógenos de manera dependiente del SA, si bien no interfiere con la inducción de genes de defensa que dependen del JA (Andreasson et al., 2005) (Figura 3).

Relación entre las vías de señalización en respuesta al JA y al SA mediadas por MAPK: diversos estudios demuestran que tanto AtMPK4 como AtMPK6 están involucradas en los procesos que desencadenan la respuesta de defensa en las plantas, en los que también están involucradas las vías de señalización por el JA y el SA. AtMPK4 regula positivamente la respuesta al JA (Brodersen et al., 2006); mientas que el módulo AtMEKK1-AtMKK1/2-AtMPK4 actúa como un regulador negativo en la respuesta inmune y en la señalización por el SA. En el proceso de senescencia de las hojas inducido por el SA, AtMPK6 induce la actividad de AtNPR1 (Nonexpresser of PR Genes 1, por sus siglas en inglés) (Chai, Liu, Zhou & Xing 2014). Por su parte, el módulo AtMKK3-MPK6 reprime la actividad de MYC2, un regulador positivo de la biosíntesis del JA (Takahashi et al., 2007).

El ácido abscísico o ABA (Abscisic Acid, por sus siglas en inglés) participa en los procesos de adaptación de la planta a diversas condiciones estresantes, como son el frío, la salinidad, la sequía, y los ataques por patógenos, pero principalmente tiene que ver con la respuesta a una baja disponibilidad de agua.

Respuesta al estrés: cuando ocurre un incremento en los niveles de H₂O₂ inducido por el ABA, la cinasa AtMKK1 regula la expresión y activación de los genes que codifican para una familia de catalasas denominados CAT 1, CAT2 y CAT3. Además, el tratamiento con PD98059, un inhibidor de la actividad de las MAP2K, suprime la expresión de CAT1 y el análisis de la mutante por pérdida de la función mkk1, mostró un decremento en los niveles de CAT1 (Xing, Jia & Zhang, 2007). Mientras que en una línea que sobre-expresa AtMKK1, se registró un aumento en su expresión inducido por el ABA, que a su vez resultó en un aumento en la producción de H₂O₂ (Xing et al., 2007; Smékalová et al., 2013). AtMPK6 también se identificó como otro de los componentes de la cascada de señalización que media la respuesta al ABA. De manera concordante, la expresión de CAT1 se abate en el fondo mutante de mpk6, mientras que aumenta considerablemente en una línea que sobre-expresa a MPK6 (Xing et al., 2009). Estos resultados sugieren que el módulo AtMKK1-AtMPK6 afecta la expresión de genes regulados por ABA, siendo a su vez el responsable de la producción de H₂O₂ y de la respuesta al estrés (Xing et al., 2009) (Figura 3).

Control de la germinación, crecimiento de la raíz, apertura y cierre de estomas: por una parte, se demostró que el ABA también induce la expresión y la actividad del módulo AtMPKKK17/18-AtMKK3-AtMPK6 para que se fosforile el factor transcripcional MYC2, el cual, a través de ABA2 (ABA deficient 2, por sus siglas en inglés), modula la expresión de diversos genes implicados en la biosíntesis del ABA y en la inhibición del proceso de germinación de la semilla (Verma, Bhagat & Sinha, 2020) (Figura 3). Por otra parte, se demostró que una proteína de la familia de MAPKKK, denominada AtMPKKK20/AIK1 (ABA-Insensititive protein Kinase1, por sus siglas en inglés), regula las respuestas al ABA. Las mutantes de inserción de T-ADN en AIK1 (aik1) mostraron insensibilidad al ABA durante el crecimiento de la raíz y el control de apertura de los estomas. Un análisis de complementación de la fluorescencia bimolecular mostró que AtMPK3, AtMPK6 y AIK1 interactúan con AtMKK5 (Li et al., 2017). En tanto las mutantes mpk6 y mkk5 muestran un fenotipo similar a la mutante aik1. Además, la actividad de MPK6 se incrementó por el ABA en plántulas del tipo silvestre, pero esta activación se vio afectada en la doble mutante aik1/mkk5. Lo cual sugiere que el módulo AIK1-AtMKK5-AtMPK6 actúa regulando el crecimiento de la raíz primaria y el control de la apertura y el cierre de los estomas de una manera dependiente del ABA (Li et al., 2017). (Figura 3).

En resumen, a través de las cascadas de señalización mediadas por MAPK, el ABA induce a la regulación transcripcional, la acumulación, la estabilidad y la actividad de diversas proteínas que participan en la germinación, el crecimiento de la raíz y el funcionamiento de los estomas.