El descubrimiento de los antibióticos revolucionó la medicina y la calidad de vida de las personas, no obstante, la creciente resistencia microbiana a dichos antibióticos alarma los sistemas de salud, tanto humano como animal, a nivel mundial, esto debido a la creciente dificultad para tratar infecciones y al lento desarrollo de nuevas drogas, adicional el uso de antibióticos como promotores de crecimiento y salud en la alimentación animal, contribuyen al aumento en la resistencia, por lo que, se ha visto necesario recurrir a otras opciones, siendo los remedios antiguos, basados en plantas, la mejor opción (Boire et al., 2013; Granados-Chinchilla, 2017).

Las plantas producen una gran variedad de metabolitos secundarios o fitoquímicos, muchos de los cuales tienen función protectora contra predadores, contando para esto con características biocidas, antimicrobianas y/o de repelencia a herbívoros. Dentro de estos metabolitos secundarios se conocen actualmente más de 3000 aceites esenciales distintos, de estos, aproximadamente 300 son importantes a nivel comercial e industrial, debido a su sabor y fragancia, siendo utilizados principalmente en la industria de alimentos y la perfumería (Bassolé y Juliani, 2012).

Los aceites esenciales son conocidos desde épocas antiguas por su propiedad natural antimicrobiana; muchas plantas han mostrado ser efectivas en diversas aplicaciones como control del crecimiento y disminución de la sobrevivencia de microorganismos (Fischer y Phillips, 2008; Rivera et al., 2015).

Los aceites esenciales son sustancias volátiles, fragantes de consistencia aceitosa, típicamente producida por todos los órganos de las plantas, se pueden elaborar ex vitro o ser extraídos de la planta, siendo la hidrodestilación la técnica más utilizada. Generalmente, son mezclas de veinte a sesenta componentes en concentraciones diferentes, en mayor cantidad se encuentran terpenos, terpenoides y otras moléculas con anillo aromático, las cuales tienen un papel primordial en el efecto biológico antimicrobiano de estos aceites (Bakkali et al., 2008; Bassolé y Juliani, 2012; Perricone et al., 2015).

Varios estudios indican que la actividad antimicrobiana de los aceites esenciales se debe a la inhibición o interacción de la mezcla de compuestos con múltiples blancos en la célula (Boire et al., 2013). Por ejemplo, su propiedad hidrofóbica, que resulta en la ruptura de la membrana lipídica de la membrana celular, aumentando su permeabilidad, lo que ocasiona la pérdida del contenido celular vital y su posterior muerte (Joseph y Priya, 2011).

Los microorganismos requieren de ciertas condiciones que promuevan su crecimiento y proliferación, los alimentos son fuentes ricas de nutrientes y agua, siendo el sustrato ideal para muchas especies microbianas entre ellas microorganismos responsables del deterioro de los alimentos y especies patógenas, por lo tanto, se han desarrollado agentes antimicrobianos sintéticos y preservantes químicos para los alimentos con el fin de mantener controlada la proliferación de los microorganismos (Perricone et al., 2015).

Los aceites esenciales de varias plantas han demostrado, in vitro, capacidad antimicrobiana variable contra bacterias gram positivas y gram negativas. Estos aceites también han demostrado capacidad antimicrobiana al ser adicionados a diferentes tipos de alimentos como carnes, pescado, lácteos, entre otros, aunque en cantidades mucho mayores a las utilizadas in vitro (Bassolé y Juliani, 2012), no obstante, su aplicación como preservante en la industria de alimentos puede verse limitado, ya que su actividad biológica puede ser reducida por algunos componentes de los alimentos, además el pH, la temperatura, el tipo de procesamiento o empacado, al que son expuestos los alimentos y la flora microbiana acompañante, juegan un papel importante en la modulación del efecto antimicrobiano de estos aceites esenciales (Perricone et al., 2015).

Entre las posibles aplicaciones de los aceites esenciales estudiados está su uso en alimentos como preservantes, como tratamiento de enfermedades infecciosas humanas y animales, y como promotor del crecimiento y la salud en la producción animal para consumo humano (Rivera et al., 2015). Varios estudios señalan la capacidad antimicrobiana del zacate de limón, así como también de otras especies como la guayaba (Fischer y Phillips, 2008; Joseph y Priya, 2011).

El zacate de limón (Cymbopogon citratus (DC.) Stapf) en algunos lugares es también conocido como malojillo o pasto de limón. Este género está compuesto de aproximadamente 55 especies, y se distribuye de forma nativa en áreas del trópico y el semitrópico de Asia, y es cultivada en países tropicales. El aceite esencial extraído de la planta de zacate de limón ha sido probado en bacterias como: Bacillus subtilis, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Salmonella enterica serovar Paratyphi y Shigella flexneri, obteniendo resultados antibacteriales positivos, los cuales se atribuyen a tres compuestos específicos que son: el α-citral y el β-citral que individualmente actúan sobre bacterias gram negativas y gram positivas, y el mirceno que por sí solo no presenta actividad antibacteriana apreciable (Shah et al., 2011).

La guayaba (Psidium guajava L.) es una especie que pertenece a la familia de las Myrtaceaes, ampliamente utilizada por diferentes culturas para el control de varias enfermedades como la malaria, la gastroenteritis, vómitos, diarrea, úlceras, heridas, dolores de garganta, entre otras condiciones. El aceite esencial de hoja de guayaba, se ha utilizado en la producción de perfumes, aromaterapia, cosméticos, fisioterapia y nutrición, además, se ha probado su actividad antimicrobiana en diferentes cepas de Staphylococcus aureus, Salmonella spp y Escherichia coli, mostrando una importante actividad antimicrobiana sobre las dos primeras especies, siendo su fuerte acción inhibitoria explicada por la presencia de una alta concentración de compuestos químicos activos en la planta (Joseph y Priya, 2011).

Existen diferentes métodos para probar la actividad antimicrobiana de extractos botánicos incluyendo aceites esenciales, estos se pueden agrupar en tres clases: difusión, dilución o métodos auxográficos. Entre los procedimientos análiticos más utilizados en aceites esenciales están: concentración mínima inhibitoria (MIC), concentración mínima bactericida (MBC), concentración bacteriostática y concentración bactericida (Perricone et al., 2015). La escogencia del método analítico va a depender de las características químicas y físicas del extracto a evaluar y del uso final que se quiere dar a dicho extracto, por ejemplo, como bacteriostático o bactericida.

El objetivo de este trabajo fue analizar la composición química y la actividad antimicrobiana de los aceites esenciales de las hojas de guayaba (P. guajava) y de zacate de limón (C. citratus), cultivadas en Costa Rica, y evaluar la actividad antimicrobiana en harina de carne y hueso usada para alimentación animal de P. guajava.

Localización y periodo experimental

Este estudio se llevó a cabo en el laboratorio de Microbiología del Centro de Investigación en Nutrición Animal (CINA), Universidad de Costa Rica, durante los meses de marzo a octubre de 2016.

Material vegetal

Las hojas de guayaba silvestre (Psidium guajava L.) (fruto con pulpa rosada) se recolectaron de la provincia de San José en los cantones de Montes de Oca (09º56’11” N 84º02’43” O, altitud 1210 msnm. Condiciones de temperatura, humedad relativa y precipitación promedio de 25,3 ºC, 61% y 8,4 mm, respectivamente) y Escazú (09º53’24” N 84º11’22” O, altitud 1717 msnm. Condiciones de temperatura, humedad relativa y precipitación promedio de 23,1 ºC, 71% y 35,8 mm, respectivamente). El zacate de limón (Cymbopogon citratus (DC.) Stapf), fue recolectado en la provincia de San José, cantón de Escazú y en la provincia de Heredia, cantón de Sarapiquí (10º25’53,14” N 84º00’10,51” O, altitud 37 msnm. Condiciones de temperatura, humedad relativa y precipitación promedio de 30,4 ºC, 68% y 16,8 mm, respectivamente). Se seleccionaron dos localidades distintas con el fin de evaluar si la composición química y la actividad antimicrobiana variaban dependiendo de la posición geográfica. Se escogieron zonas donde se tenía acceso al material vegetal requerido para esta investigación. Para ambas especies se eligieron hojas sanas, sin importar su estadio de desarrollo. Se lavaron con agua destilada y se cortaron en trozos de aproximadamente 1 cm de longitud. Se mantuvieron en refrigeración (4 °C) hasta ser utilizadas.

Extracción aceites esenciales

Para la extracción de los aceites esenciales se utilizó la metodología previamente descrita en Granados-Chinchilla et al. (2016), que se basa en la técnica de hidrodestilación (Granados-Chinchilla et al., 2016). Se prepararon balones aforados con 75 g de material vegetal. La destilación duró tres horas y media, a una temperatura de 100 °C, y se mantuvo constante el volumen del balón en aproximadamente 400 ml de agua destilada. En campana de gases, se realizó la separación de fases del destilado, con fracciones de 50 ml de líquido, y como disolvente orgánico éter etílico. Se dejó evaporar el éter, para así recuperar únicamente el aceite esencial de las plantas, posteriormente, se pesó para obtener un rendimiento de extracción. La cantidad de material vegetal inicial utilizado para la extracción de aceites esenciales fue de 1125, 450, 1605 y 105 g para el zacate de limón de Escazú y de Sarapiquí, hoja de guayaba de Escazú y de San Pedro, respectivamente.

Determinación de la composición química de los aceites esenciales

La composición química se analizó mediante cromatografía de gases y espectrometría de masas, con base en la metodología previamente descrita en Granados-Chinchilla et al. (2016). Se empleó de una dilución 1:25 con éter etílico, y el análisis de los cromatogramas con los programas MassHunter Unknown Analysis verisón B.07.00 y Qualitative Analysis versión B.06.00 SP1 (Agilent Technologies). Los constituyentes se identificaron mediante la comparación del espectro con los de la librería NIST 14, solo se consideraron las coincidencias que tuvieran un factor de concordancia mayor al 80%, en todos los casos se utilizó geraniol (98% de pureza) como estándar interno. Los analitos con composición relativa ≥ 5%, fueron monitoreados simultáneamente con la modalidad SIM (selected-ion monitoring) para confirmar la identidad de los compuestos.

Cepas bacterianas

Se trabajó con las siguientes cepas bacterianas, Escherichia coli (ATCC 25922), E. coli O157:H7 (ATCC 43888), Staphylococcus aureus (ATCC 25923), Salmonella enterica serovar Typhimurium (ATCC 14028), S. enterica serovar Enteritidis (ATCC 13076), S. enterica serovar Choleraesuis (ATCC 10708) Bacillus cereus (ATCC 13061), B. subtilis (ATCC 11774), Pseudomona aeruginosa (ATCC 27853) y Proteus mirabilis (ATCC 25933). Se subcultivaron en agar Standard, y se incubaron a 35 °C por 24 h previo a los ensayos; para su uso, se elaboraron diluciones McFarland 0,5, la concentración se corroboró y ajustó utilizando un espectrofotómetro, una absorbancia entre 0,08-0,12 a 625 nm que corresponde a 108 UFC/ml (Balouiri et al., 2016). Se utilizó caldo Mueller Hinton ajustado con cationes para trabajar con las bacterias; no obstante, S. aureus utiliza una variación, a dicho caldo se le agrega 20% NaCl, al considerarse una bacteria halofílica (CLSI, 2012).

Prueba de difusión con disco y determinación del porcentaje de inhibición del crecimiento microbiano

Se realizó el procedimiento de difusión con disco, tal como lo indican Jorgensen y Ferraro (2009), en el cual se utilizaron los cuatro aceites esenciales en una dilución 8:2 con dimetilsulfóxido (DMSO), un control positivo con tetraciclina (30 μg/ml) y un control negativo con DMSO. El procedimiento consiste en inocular uniformemente, con la bacteria de interés, la superficie de una placa de agar; colocar sobre la superficie del agar un disco de papel filtro (de aproximadamente 6 mm) que contenga el agente antimicrobiano en la concentración deseada e incubar bajo las condiciones idóneas requeridas por las bacterias utilizadas. Los agentes antimicrobianos se difunden en el agar e inhiben la germinación formando halos donde no hay crecimiento bacteriano visible, el diámetro de los halos de inhibición es relativo a la susceptibilidad del microorganismo al antimicrobiano probado.

Con base en el diámetro de los halos, se utilizó la siguiente fórmula para obtener el efecto de inhibición de cada aceite con respecto al halo generado por el antibiótico (Martínez et al., 1997) (fórmula 1):

fórmula 1

Determinación de la concentración mínima inhibitoria (MIC)

La determinación de la concentración mínima inhibitoria (MIC), que corresponde a la concentración más baja del agente antimicrobiano probado que sea capaz de inhibir el crecimiento de los microorganismos de forma visible, se obtuvo con base en el procedimiento de microdilución en placa de 96 pozos, como lo indica Balouiri et al. (2016). Este procedimiento involucró la elaboración de diluciones seriadas dobles de los aceites esenciales a probar en DMSO. Estas diluciones se dispersaron en placas de 96 pozos, posteriormente, se inocularon con una dilución bacteriana ajustada a un McFarland 0,5, y se incubaron 48 h a 35 °C. La resazurina se usó como indicador de viabilidad de las bacterias probadas; la resazurina (azul) es reducida a resorufina (rojo) por óxido reductasas que se encuentran principalmente en la mitocondria de células vivas. Luego de la incubación, por observación visual, se determinó la MIC, que correspondió a la dilución menos concentrada del aceite esencial que presentaba color azul, para cada bacteria con cada aceite esencial probado. El control negativo contenía 50 µl de antibiótico (Tetraciclina 30 µg/ml), 50 µl de caldo Mueller Hinton ajustado con cationes y 10 µl de resazurina 0,01 g/100 ml. El control positivo contenía 10 µl DMSO, 40 µl caldo Mueller Hinton ajustado con cationes, 50 µl dilución bacteriana y 10 µl de resazurina.

Determinación de la concentración bactericida inhibitoria (MBC)

La determinación de la concentración bactericida inhibitoria (MBC), se efectuó una vez conocido el valor de la MIC en cada bacteria para los cuatro aceites. Luego de la lectura visual de la MIC, se tomaron 10 µl del pozo designado como la mínima concentración inhibitoria, o 10 µl del pozo anterior (correspondiente al doble de la concentración designada como MIC), o 10 µl del pozo posterior (correspondiente a la mitad de la concentración designada como MIC), y se cultivaron en placas de agar Mueller Hinton. Se dejaron incubando por 24 h a 35 ºC. Luego de la incubación se revisaron las placas en busca de unidades formadoras de colonias (UFC) bacterianas. La concentración bactericida inhibitoria se tomó como aquella en la cual no hubo crecimiento bacteriano visible en las placas de agar.

Obtención de extractos adicionales

A partir de las hojas de guayaba de Escazú se elaboraron cuatro extractos botánicos adicionales, se eligió este material vegetal ya que fue el que presentó la mayor actividad antibacteriana en la prueba MIC. Uno de los extractos se obtuvo mediante la técnica de infusión, se pesaron 150 g de material vegetal, el cual se encontraba en pequeños trozos, y se le agregó 300 ml de agua hirviendo, se dejó reposar por 15 min y posteriormente se filtró.

Los siguientes tres extractos se obtuvieron mediante una maceración con tres disolventes diferentes, basado en el trabajo de Jahani et al. (2016), con algunas modificaciones, se pesaron 10 g de material vegetal y se dejaron reposar por 48 h con 30 ml de etanol o metanol o acetona-agua (80:20), posteriormente, se filtraron y se dejó evaporar el disolvente. Se realizó una prueba de difusión en disco para los cuatro extractos, con Escherichia coli y Salmonella enterica serovar Typhimurium.

Ensayo en harina de carne y hueso

Se colocaron 400 g de harina de carne y hueso en un autoclave por un periodo de 15 min a 121 °C. Posteriormente, y de forma aséptica, se prepararon bolsas de ensayo estériles con 25 g de la harina. Ensayo 1: A los 25 g de harina de carne y hueso estéril se le agregaron 10 ml de una disolución 1:80 de aceite esencial de hojas de guayaba (Psidium guajava) en agua destilada y se dejó reposar a temperatura ambiente durante 1 h, luego se inoculó con E. coli o con S. enterica serovar Typhimurium. Ensayo 2: Se inoculó con E. coli o con S. enterica serovar Typhimurium los 25 g de harina de carne y hueso estéril y se dejó reposar a temperatura ambiente durante 1 h, luego se le agregaron 10 ml de una disolución 1:80 de aceite esencial de hojas de guayaba (P. guajava) en agua destilada.

Los ensayos se efectuaron por duplicado. Se realizaron pruebas para cuantificar E. coli y determinar presencia o ausencia de S. enterica serovar Typhimurium, en el tiempo 0 y pasados 7 días de incubación a temperatura ambiente. Los análisis de E. coli y Salmonella se ejecutaron siguiendo los métodos establecidos y acreditados (según norma INTE/ISO/IEC 17025) en el laboratorio de microbiología del CINA (Molina et al., 2016), los cuales están basados en los ensayos AOAC 967.25/967.28/994.04/978.24 y métodos 9.91-9.94 de la APHA/CMMEF (basados en la técnica de número más probable) y 34.22-34.24. Para corroborar los resultados, se repitieron los ensayos que daban resultados positivos de inhibición bacteriana, de la misma forma expuesta anteriormente.

Análisis estadístico

Se realizó un análisis de varianza con una prueba pos hoc de Tukey para comparar el porcentaje de inhibición de los cuatro aceites evaluados considerando la localidad. El mismo se llevó a cabo con base en el programa IBM PAWS Statistics 22 (SPSS, Inc., Armonk, NY). P < 0,05 se usó como el punto de corte para la diferencia significativa.

Extracción de aceites esenciales

El porcentaje de recuperación (la cantidad total (g) de material vegetal utilizado por planta/la cantidad total de aceite extraído de cada planta) fue menor al 1 g aceite/100 g material vegetal en los cuatro aceites preparados (Figura 1).

Figura 1

Figure 1. Recovery of essential oil from Cymbopogon citratus from Escazú and Sarapiquí and from Psidium guajava leaf from Escazú and San Pedro, San José, Costa Rica. Centro de Investigación en Nutrición Animal (CINA), Universidad de Costa Rica. 2016.

El proceso de extracción de aceites, se caracteriza por bajos porcentajes de recuperación, en el caso del zacate de limón, se reportó que la mayor cantidad de aceite (3%) que se extrajo, con la hidrodestilación, a partir de hojas secas (Negrelle y Gomes, 2007), resultado superior a la recuperación obtenida en este estudio la cual fue de 0,33-0,43% (Figura 1), por lo general, para zacate de limón se reportan entre 0,2 y 0,5% (Shah et al., 2011), mientras que, la guayaba alcanza un rendimiento de extracción de 0,2% (Moura et al., 2012), muy similar al obtenido en esta investigación de 0,15-0,23% (Figura 1). Varios factores del proceso de extracción, pudieron ser responsables de generar bajos rendimientos de recuperación de aceites esenciales; estos incluyen el método empleado, modificaciones al método de destilación, el cual, si por ejemplo, en lugar de sumergir el material en el agua, genera primero el vapor y este pase por el material vegetal, siendo el elemento que arrastra los componentes volátiles, podría mejorar la técnica para obtener mejores resultados (Guan et al., 2007). También el equipo utilizado en esta investigación (aparato general de hidrodestilación), pudo contribuir al porcentaje de recuperación de aceite obtenido en este estudio. Actualmente, existen equipos más industrializados que buscan obtener mayor cantidad de aceite esencial, entre ellos, destiladores que tienen una entrada para el arrastre de vapor, separador de aceites, o computadoras que analizan y monitorean el proceso de extracción (Schmidt, 2010). Adicionalmente, la falta de optimización de las condiciones del proceso, como, por ejemplo, la temperatura, la cantidad de agua, el tamaño de los trozos de material vegetal, el tiempo de destilación, entre otros, podrían disminuir los porcentajes de recuperación de los aceites esenciales (Cerpa, 2007). Los rendimientos de extracción de aceites menores al 1% obtenidos en esta investigación, fueron el mayor factor limitante para realizar pruebas más específicas de capacidad antimicrobiana e incluir otras matrices alimentarias.

Las diferencias encontradas en composición química de los aceites esenciales y la concentración de sus componentes, puede deberse a que se evaluó material procedente de dos localidades para cada planta, las cuales presentan variaciones en sus condiciones climáticas, geográficas y de suelo, que se consideran factores que, según de-Souza et al. (2011) y Sonker et al. (2014), influyen en la constitución de los aceites, incluso en plantas de la misma especie.

El citral, es el componente en mayor concentración en el aceite de zacate de limón (70-80%) (Negrelle y Gomes, 2007). Esto concuerda con los resultados obtenidos en esta investigación donde el α y β citral corresponden al 80,28% de los compuestos del aceite esencial de zacate de limón procedente de Escazú, y el 70,52% del aceite procedente de Sarapiquí (Cuadro 1). La importancia de este abundante compuesto es que se le adjudican las propiedades antimicrobianas de la planta (Zulfa et al., 2016). Otro compuesto importante en el zacate de limón, es el mirceno, el cual es un monoterpeno, cuya función es reforzar el efecto antimicrobiano del citral (Negrelle y Gomes, 2007). En los resultados obtenidos, el mirceno se encontró en bajas concentraciones en el zacate de limón procedente de Escazú, se presentó como compuesto traza, ya que correspondió a menos del 1%, mientras que, en el aceite de Sarapiquí, la concentración fue de 9,18% (Cuadro 1). En una investigación anterior se demostró que el mirceno por sí solo tiene muy bajo efecto antimicrobiano en las bacterias probadas (Granados-Chinchilla et al., 2016).

Con respecto a los compuestos del aceite de la hoja de guayaba, la mayoría corresponden a sesquiterpenos, sin embargo, Nazzaro et al. (2013) indicaron que muchos de estos compuestos, pertenecientes a los terpenos, poseen poca o ninguna actividad antimicrobiana, tal es el caso del limoneno, cuya actividad es escasa, este se encontró en concentraciones de aproximadamente 3% para ambas localidades probadas (Cuadro 2). En la investigación de Granados-Chinchilla et al. (2016), se comprobó la poca actividad antibacteriana de este compuesto. Autores como Arima y Danno (2002) sugirieron que la hoja de guayaba presenta buena actividad antimicrobiana, y que se debe a compuestos pertenecientes al grupo de los flavonoides.

A compuestos como el cariofileno y el óxido de cariofileno, se les atribuye la responsabilidad de la propiedad antioxidante en la guayaba (Roy et al., 2006). El cariofileno ha mostrado poca capacidad antimicrobiana tanto contra bacterias gram positivas como gram negativas (Granados-Chinchilla et al., 2016). El compuesto 2,4-di-tert-butilfenol se encontró en mayor porcentaje 30,56% en el aceite esencial de guayaba proveniente de Escazú en comparación con proveniente de San Pedro con un 7% (Cuadro 1), a este compuesto se le ha atribuido capacidad antimicrobiana en otras investigaciones (Padmavathi et al., 2015; Varsha et al., 2015). La presentación 2,4-di-tert-butilfenol en mayor proporción en el aceite de guayaba proveniente de Escazú (30,56%) podría ser una de las razones de que este aceite haya mostrado una mayor actividad antimicrobiana que el proveniente de San Pedro (7,53%) (Cuadro 1).

En general, en las pruebas de actividad antimicrobiana, los aceites esenciales probados, presentaron un mayor efecto antibacterial ante bacterias gram positivas (Cuadro 2). Esto se debe, según Nazzaro et al. (2013) y Fernandes et al. (2014), a que la pared de las bacterias gram positivas consta de 90-95% de peptidoglicano, por lo que es sencilla la penetración de moléculas hidrofóbicas, mientras que, las bacterias gram negativas, tienen una capa delgada de peptidoglicano y una capa externa de lipopolisacáridos, además, entre ambas poseen enzimas capaces de inactivar moléculas desde fuera de la célula bacteriana. Lo anterior, se observó en la prueba de difusión por disco, donde géneros como Bacillus y Staphylococcus, que corresponden a gram positivos, presentaron porcentajes de inhibición bacteriana de 17 y 18% con el aceite de hoja de guayaba procedente de San Pedro, que en general tuvo un rendimiento de inhibición de 0 a 9% en las bacterias gram negativas evaluadas (Cuadro 2).

En el caso de los extractos botánicos preparados a partir de las hojas de guayaba de Escazú, el extracto con acetona presentó la mayor actividad antibacteriana (Cuadro 3), lo cual podría deberse a la capacidad de la acetona de disolver componentes tanto hidrofílicos como lipofílicos (Eloff, 1998), tal es el caso de los polifenoles, que presentan una importante actividad antioxidante y antimicrobiana, y se encuentran presentes en la guayaba (Zapata et al., 2013).

El resultado obtenido con los extractos metanólicos y etanólicos, que no presentaron efecto inhibitorio, no fueron acorde a lo reportado en la literatura, ya que Biswas et al. (2013) e Ifeanyichukwu et al. (2015), indicaron que los extractos de hoja de guayaba, con estos mismos disolventes, presentan una notable actividad inhibitoria contra algunas bacterias gram positivas y gram negativas. La elección del aceite esencial de hoja de guayaba procedente de Escazú, para realizar pruebas en harina de carne y hueso, se debió a que presentó buenos resultados en la prueba de difusión en disco y las menores MIC (Cuadro 2), lo que coincide con lo expuesto por de-Souza et al. (2011), que indicaron que el aceite de guayaba presenta una importante actividad bactericida a bajas concentraciones. Una MIC baja presenta importantes ventajas, basándose en la dificultad de obtener los aceites esenciales por los bajos rendimientos de extracción.

El aceite de guayaba presenta varios compuestos de la familia de terpenos y flavonoides con una fuerte acción antibacteriana (Pérez et al., 2008), los cuales, en conjunto, podrían ser más eficientes que la acción del citral y mirceno del zacate de limón, que con base en los resultados obtenidos (Cuadro 2), se puede concluir que tienen una importante actividad antimicrobiana.

Los ensayos de aceite esencial de guayaba proveniente de Escazú realizados en una matriz de harina de carne y hueso no presentaron la actividad antibacteriana esperada contra Salmonella. Esta baja eficiencia del aceite en la harina se pudo deber a la limitación del efecto antibacteriano de los componentes del aceite, causado por las estructuras físicas de los alimentos, como sus componentes y su pH, o por factores extrínsecos como la temperatura, o las características de los microorganismos (Perricone et al., 2015).

La harina de carne y hueso, la cual se usa como materia prima para la elaboración de alimentos para animales productivos monogástricos y para perros, presenta una importante cantidad de proteína (45,9%) y de grasa (18,2%) (Leiva et al., 2018). Las altas concentraciones esos nutrientes en matrices de alimentos, indica que pueden generar un efecto de protección en las bacterias a nivel de membrana y mediante la absorción del aceite esencial (Perricone et al., 2015). En tales casos, se ha reportado que es necesario aplicar una concentración de aceite mayor a la MIC obtenida en los ensayos in vitro (Fischer y Phillips, 2008). En esta investigación además, la consistencia grasosa de la harina de carne y hueso, dificultó la aplicación del aceite y la distribución homogénea del mismo.

La prueba para determinar Salmonella spp., corresponde a una prueba cualitativa de presencia o ausencia, por lo que, los resultados obtenidos (Cuadro 4) no dan la información suficiente para indicar si el aceite presentó capacidad inhibitoria, ya que no se determinó la concentración de bacterias en el transcurso del tiempo. Se indica que el aceite esencial disminuye la cantidad de Salmonella Typhimurium en ingredientes para piensos (Burt, 2004; Cochrane et al., 2016), sin embargo, esa disminución puede variar dependiendo de la matriz analizada.

En el caso de Escherichia (Cuadro 4), el aceite esencial de hoja de guayaba en el ensayo # 2 presentó un 100% de capacidad antimicrobiana en contraste con el mismo aceite en el ensayo 1, esto podría deberse a la inactivación del aceite por los diferentes componentes del alimento, al estar primero una hora en el alimento antes de entrar en contacto con las bacterias. Sin embargo, otros autores han demostrado la efectividad de los aceites esenciales de otras plantas, en la conservación de formulaciones proteicas y cárnicas y la inhibición o control de E. coli en ingredientes similares a la harina de carne y hueso (Arellano y Montesdeoca, 2016).

Los aceites esenciales extraídos a partir de zacate de Limón cultivado en las localidades de Escazú y Sarapiquí, así como el aceite esencial extraído de hojas de guayaba provenientes de Escazú, presentaron actividad microbiana contra bacterias gram postivas y gram negativas. En el caso del zacate de Limón esta capacidad antimicrobiana es posiblemente debida a la alta concentración (70-80%) de α y β citral encontrados en esta investigación y que ya se ha descrito que poseen efecto antimicrobiano. En el caso del aceite esencial de hojas de guayaba, la capacidad antibacteriana que se presentó en el cultivo de Escazú puede deberse en parte al compuesto 2,4-di-tert-butilfenol; una evidencia de esta hipótesis es la poca o nula actividad antimicrobiana encontrada en las hojas de guayaba cultivadas en San Pedro, las cuales presentaron una menor concentración de este compuesto.

El aceite esencial de hoja de guayaba de Escazú mostró ser efectiva al disminuir la concentración de Escherichia coli en harina de carne hueso, la cual es una materia prima frecuentemente usada en la elaboración de alimentos para perros, aves y cerdos. Sin embargo los efectos de este aceite esencial en harina de carne y hueso contaminada con Salmonella no fueron concluyentes.

Según los resultados obtenidos en esta investigación los aceites esenciales de zacate de Limón y de hoja de guayaba cultivadas en Costa Rica, podrían presentar un efecto antimicrobiano contra bacterias relevantes para la inocuidad y la vida útil de harina de carne y hueso usada en alimentación animal. Se requiere futuras investigaciones con mayor número de repeticiones, con mayor variedad de alimentos para animales y que además incluyan pruebas en animales, en donde se tomen en cuenta pruebas como palatibilidad, rendimientos productivos, entre otros, para evaluar la aplicabilidad del uso de estos extractos botánicos como alternativa al uso de antibióticos en alimentación animal. La futura implementación de extractos botánicos producidos en el país como alternativa al uso de antibióticos en alimentación animal es de alta relevancia comercial y de salud pública.