La laguna de Yahuarcocha está situada en el norte del Ecuador, en la provincia de Imbabura; geográficamente se ubica entre 00º 22’ 300 N y 78º 06’ 100 O a una altitud de 2 192 m s.n.m. Presenta una temperatura anual media de 20 a 25 °C [26], con una superficie 230 hectáreas, un máximo de 7.9 metros (m) de profundidad y 12.7 millones de metros cúbicos (m³) de agua [25]. La laguna se encuentra en un proceso acelerado de eutrofización promovido por la colonización de cianobacterias del género Cylindrospermopsis sp. y los altos valores de conductividad y alcalinidad [23].

En la laguna existen aproximadamente 19 especies de aves acuáticas, donde la especie predominante es la Focha Andina (Fulica ardesiaca), y el Cormorán Neotropical (Phalacrocorax brasilianus) [22]. La vegetación superficial está dominada por la Totora (Scirpus californicus) y la vegetación acuática por Potamogeton pusillus [26]. La fauna íctica está compuesta por especies introducidas como: el pez cola de espada (Xiphophorus hellerii), el pez Guppy (Poecilia reticulata), la carpa común (Carassius auratus) y la Tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus) [27].

La colecta de muestra fecal por especie se realizó en marzo del 2018 en cuatro días con un esfuerzo total de 12 horas (3h/jornada). La captura de las aves se realizó a través de un método combinado de trampas de red, distracción lumínica nocturna [28], y captura manual directa en los dormideros con el uso de un bote acuático entre las 20h00 a 23h00. Las aves capturadas fueron colocadas en jaulas tipo huacal hasta ser examinadas

y manipuladas. Cada individuo fue marcado con un anillo auxiliar de color previo a la liberación para evitar el doble muestreo. Las heces de todas las aves fueron colectadas de forma individual (3-5 g) en el sitio de estudio en la jaula de descanso por defecación espontánea en un tiempo máximo de 10 minutos, y no se administró ningún tipo de fármaco para la obtención de las muestras. Previo a la liberación de los individuos en los sitios de captura, se realizó un examen físico externo a cada ave para asegurar su bienestar. Ningún ave tuvo signos de traumatismos externos o visibles al momento de la examinación y posterior liberación.

Para la identificación y cuantificación de parásitos gastrointestinales se obtuvo una muestra de heces de al menos 4 g, de los cuales se utilizó al menos 1 g para la técnica directa o frotis fecal fresco y 3 gramos para la cuantificación parasitaria por la Técnica de McMaster [29,30,31,32]. Para realizar el frotis fecal fresco se colocaron por separado una gota de solución salina (0,85 %) y una gota de solución de Lugol (4 %) en un portaobjetos. Colocamos una pequeña cantidad de heces, la mezclamos de forma independiente con cada gota y cubrimos la muestra con un cubreobjetos. Los portaobjetos con el frotis fecal fresco se llevaron al microscopio y se examinaron con un aumento total de 100x y 400x para verificar las especies parasitarias [33].

Para el procesamiento de muestras fecales mediante el método McMaster preparamos una suspensión de heces (2 gramos) con 28 ml de solución de flotación SF5 - solución Sheater (454 g NaCl + 355 ml de agua + 6 ml de formaldehído, gravedad específica 1,25 mg/dl) para cada muestra. Homogeneizamos cuidadosamente la muestra fecal durante aproximadamente 30 segundos (dependiendo de la consistencia de la muestra) mezclándola con una espátula de madera, y pasándola por un colador. Utilizando una pipeta Pasteur, en un ángulo de 45 grados, trasladamos la solución obtenida previamente a cada una de las cámaras. Dejamos que los huevos floten 5 minutos y se peguen a la rejilla. Luego miramos bajo el microscopio; el valor total de huevos de cada cámara fueron sumados y multiplicados por un factor de cincuenta (50) para obtener el número de huevos por gramo de heces (HPG) o de ooquistes por gramo de heces (OPG) [34].

Todos los datos se ingresaron en un archivo de Excel (Microsoft 2010). El análisis estadístico se realizó utilizando la versión R-4.2.3. Las especies de aves se trataron como variables categóricas y se presentaron como frecuencias y porcentajes. Cada muestra fue procesada por cada método diagnóstico; la muestra que resultó positiva con cualquiera de los métodos se consideró como verdadero positivo. La variable de respuesta para el modelo de prevalencia de parásitos gastrointestinales comprendía la ausencia o presencia de cualquier género de parásito dentro de cada huésped; la intensidad de la infección se determinó como el número de huevos/ooquiste por gramo de heces; y la coinfección como el número de huevos/ooquistes combinados dentro de cada individuo o de cada individuo infectado. La intensidad de infección fue evaluada considerando los rangos de estimación propuestos por Sabatini et, al. [34]. siendo: leve (< 200 HPG/OPG), moderada (> 200-800 HPG/OPG), y alta (> 800 HPG/OPG).

El total de aves capturadas fue 48, de las cuales: el Cormorán neotropical (17/48), Gallinula chloropus (5/48), Oxyura jamaicensis (5/48), Fulica ardesica (18/48) y Bulbucus ibis (3/48). La prevalencia fue del 48 % (23/48), con al menos un género parasitario. Por especie, la mayor prevalencia corresponde a la Gallineta común 60 % (3/5); seguido de la Focha andina 50 % (9/18), el Cormorán Neotropical 47 % (8/17), el Pato rojizo andino 40 % (2/5) y la Garza bueyera 33 % (1/3) (Tabla 1, Figura 1). Se identificaron cuatro géneros de parásitos; dos a nivel de especie agrupados en tres familias: Ascarididae; Trichinellidae, Eimeriidae (Figura 2)

Tabla 1. Prevalencia de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves de acuáticas de la laguna Yahuarcocha, Imbabura.

Tabla 1 Tabla 1 Prevalencia de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves de acuáticas de la laguna Yahuarcocha, Imbabura.

Especie/ hospedador	Nombre común	Total -individuos	N individuos parasitados	Prevalencia /sp.
Phalacrocorax brasilianus	Cormorán neotropical	17	8	(47 %)
Gallinula chloropus	Gallineta común	5	3	(60 %)
Oxiura jamaicences	Pato rojizo andino	5	2	(40 %)
Fulica ardesiaca	Focha andina	18	9	(50 %)
Bulbucus ibis	Garza bueyera	3	1	(33 %)
Total		48	23

Figura 1 Figura 1 Prevalencia de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves acuáticas de la laguna Yahuracocha, Imbabura, Ecuador. Figura 1 Prevalencia de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves acuáticas de la laguna Yahuracocha, Imbabura, Ecuador.

Hospedador

Figura 1. Prevalencia de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves acuáticas de la laguna Yahuracocha, Imbabura, Ecuador.

Figura 2 Figura 2 Identificación microscópica (40 x) de endoparásitos en aves acuáticas de la laguna Yahuacorcha, Figura 2 Identificación microscópica (40 x) de endoparásitos en aves acuáticas de la laguna Yahuacorcha,

Figura 2. Identificación microscópica (40 x) de endoparásitos en aves acuáticas de la laguna Yahuacorcha,

Imbabura, Ecuador: (A) Ascaridia galli (FC-Y-40); (B) Capillaria spp. (COR-Y-2); (C) Eimeria spp (FC-Y-14); (D) Heterakis gallinarum (COR-Y-29)

Con respecto a la frecuencia; Eimeria sp. (17/23) estuvo presente en las cinco especies hospedadoras con valores de: 35 % (6/17) en la Focha andina, 29 % (5/17) en Cormorán neotropical, y porcentajes más bajos estimados en los tres restantes. Así mismo, A. galli estuvo presente en tres de las cinco especies hospedadoras con 43 % (3/7) tanto en el Cormorán neotropical, como en la Focha andina, y 14,3 % (1/7) en el Pato rojizo andino (Figura 2).

Heterakis gallinarum tuvo un rango de frecuencia de 25 % a 50 % en tres especies hospedadores: 50 % (2/4) en el Cormorán neotropical y 25 % (1/4) en Focha andina y Gallineta común.; finalmente Capillaria sp. obtuvo 50 % (1/2) en el Cormorán neotropical y en la Focha andina. Adicionalmente, se presentaron infecciones mixtas en siete individuos de cuatro especies, excepto en la Garza bueyera. Las infecciones mixtas identificadas fueron: A. galli + Capillaria sp. (1/7), Heterakies sp. + Eimeria spp. (3/7), Capillaria sp. + Eimeria spp (1/7), A. galli + Eimeria spp. (2/7) (Tabla 2).

Tabla 2. Frecuencia de parasitismo e infecciones mixtas de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves acuáticas de la laguna de Yahuarcocha, Imbabura.

Tabla 2 Tabla 2 Frecuencia de parasitismo e infecciones mixtas de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves acuáticas de la laguna de Yahuarcocha, Imbabura. Tabla 2 Frecuencia de parasitismo e infecciones mixtas de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves acuáticas de la laguna de Yahuarcocha, Imbabura.

Con respecto a la intensidad de infestación, las aves presentaron valores promedio de 271 (±74) huevos por gramo de heces (HPG) de A. galli; 275(±98) HPG de H. gallinarum; 125 (±25) HPG de Capillaria sp. y de 236 (±139) ooquistes por gramo (OPG) de Eimeria spp. Las cinco especies hospedadoras presentaron un nivel de infestación de leve (<200 HPG) a moderada (>200-800 HPG/OPG). Para Eimeria spp., el Pato rojizo andino obtuvo el mayor número de ooquistes (600 OPG). Por el contrario, observamos que la parasitosis producida por A. galli fue moderada en la Focha andina (600 HPG), leve para el Pato rojizo andino (150 HPG) y el Cormorán neotropical (200 HPG). H. gallinarum tuvo infestación moderada en la Gallineta común (400 HPG), mientras que, en la Focha andina y en el Cormorán neotropical, la parasitosis fue leve (200 HPG). Capillaria sp. se presentó en dos especies con infestación leve: Cormorán neotropical (100 HPG) y Focha andina (150 HPG) (Tabla 3).

Tabla 3. Intensidad de infestación (HPG/OPG) de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves silvestres en la laguna de Yahuarcocha.

Tabla 3 Tabla 3 Intensidad de infestación (HPG/OPG) de parásitos gastrointestinales en cinco especies de aves silvestres en la laguna de Yahuarcocha.

Agente parasitario	Total Ind.	Phalacrocorax b.		Gallinula chl		Oxiura J.		Fulica A.
		n	HPG/OPG	n	HPG/OPG	n	HPG/OPG	n	HPG/OPG
Ascaridia galli	7	1	150	0	-	1	200	1	100
		1	150	-	-	-	-	1	600
		1	200	-	-	-	-	1	500
Heterakis gallinarum	4	2	150	1	400	0	0	1	200
			200	-	-	-	-	-	-
Capillaria spp.	2	1	150	0	-	0	0	1	100
Eimeria spp.	19	1	100	1	100	1	100	12	150
		1	400	-	-	-	-	-	-
			-	-	-	1	300	-	-
		1	300	2	250	1	200	2	200
		3	400	3	300	3	300	3	300
		4	500	-	-	4	600	-	-